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pGAP调控下的内切纤维素酶组成型表达及酶制剂的制备

中文摘要第4-5页
英文摘要第5-6页
1 引言第9-19页
    1.1 巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统第9-13页
        1.1.1 诱导型表达系统第9-11页
        1.1.2 组成型表达系统第11-13页
    1.2 纤维素酶第13-16页
        1.2.1 纤维素酶的种类第13页
        1.2.2 纤维素酶的来源与应用第13-15页
        1.2.3 纤维素酶活性的影响因素第15页
        1.2.4 纤维素酶的基因表达第15-16页
    1.3 本研究的目的意义及主要研究内容第16-19页
        1.3.1 本研究的目的意义第16-17页
        1.3.2 主要研究内容第17-18页
        1.3.3 技术路线第18-19页
2 材料与方法第19-32页
    2.1 试验材料第19-20页
        2.1.1 菌株与载体第19页
        2.1.2 酶和生化试剂第19页
        2.1.3 培养基及相关溶液的配置第19-20页
        2.1.4 试验仪器第20页
    2.2 毕赤酵母组成型表达载体p PIC9K-gap的构建第20-23页
        2.2.1 三磷酸甘油醛脱氢酶启动子pGAP基因的克隆第20-21页
        2.2.2 重组载体pMD18T-gap的构建第21-22页
        2.2.3 构建组成型表达载体pPIC9K-gap第22-23页
    2.3 组成型毕赤酵母表达系统的应用第23-29页
        2.3.1 以gus为报告基因,构建pPIC9K- gap -gus载体第23-26页
        2.3.2 含内切纤维素酶eg基因的毕赤酵母组成型表达系统的构建第26-29页
    2.4 组成型毕赤酵母发酵条件的优化第29-30页
        2.4.1 组成型毕赤酵母酶活的测定第29页
        2.4.2 筛选酶活最高的重组菌株第29页
        2.4.3 发酵条件的优化第29-30页
    2.5 酶学性质的测定第30页
    2.6 液态酶制剂的稳定剂制备第30-32页
        2.6.1 稳定剂对内切纤维素酶热稳定性作用第30-31页
        2.6.2 稳定剂添加量对储存稳定性的影响第31-32页
3 结果第32-47页
    3.1 毕赤酵母组成型表达载体pPIC9K-gap的构建第32-34页
        3.1.1 重组载体pPIC9K-gap的构建示意图第32页
        3.1.2 重组质粒pPIC9K-gap的构建第32-34页
    3.2 以GUS为报告蛋白,检测毕赤酵母组成型载体pPIC9K-gap的可行性第34-37页
        3.2.1 重组载体pPIC9K-gap-gus的构建示意图第34页
        3.2.2 gus基因的分离第34-35页
        3.2.3 载体pPIC9K-gap-gus的构建第35-36页
        3.2.4 重组质粒 (pPIC9K-gap-gus)的转化筛选第36页
        3.2.5 组成型表达载体pPIC9K-gap-gus在毕赤酵母中的表达与鉴定第36-37页
    3.3 含有目的基因eg的重组组成型载体pPIC9K-gap-eg的构建第37-40页
        3.3.1 重组载体pPIC9K-gap-eg构建示意图第37页
        3.3.2 p MD18T-eg的构建第37-38页
        3.3.3 构建组成型载体pPIC9K-gap-eg第38页
        3.3.4 重组表达载体pPIC9K-gap-eg的转化和筛选第38-40页
    3.4 组成型毕赤酵母发酵条件的优化第40-41页
    3.5 酶学性质的测定第41页
    3.6 液态酶的稳定剂研究第41-47页
        3.6.1 稳定剂对纤维素酶热稳定性作用第41-45页
        3.6.2 复合稳定剂对内切纤维素酶酶稳定性的影响第45-46页
        3.6.3 添加稳定剂后液态酶的储存稳定性第46-47页
4 讨论第47-49页
    4.1 影响毕赤酵母组成型表达外源蛋白的因素第47页
    4.2 提高内切纤维素酶制剂的稳定性第47-49页
5 结论第49-50页
参考文献第50-55页
在校期间发表的学术论文第55-56页
作者简介第56-57页
致谢第57-58页

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