马来酸氟吡汀缓释固体分散体口服经时特征及药效学研究
| 摘要 | 第2-4页 |
| ABSTRACT | 第4-6页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 第一章 综述 | 第11-18页 |
| 1 FM研究现状 | 第11-14页 |
| 1.1 化学名称和结构式 | 第11页 |
| 1.2 FM药理作用 | 第11-12页 |
| 1.3 FM临床应用 | 第12-13页 |
| 1.4 FM药代动力学特征 | 第13-14页 |
| 2 FM剂型研究 | 第14-15页 |
| 2.1 FM口服固体速释剂型 | 第14-15页 |
| 2.2 FM胶囊 | 第15页 |
| 2.3 FM缓释片 | 第15页 |
| 3 缓释固体分散体研究现状 | 第15-16页 |
| 3.1 缓释固体分散体剂型的特点及优势 | 第15-16页 |
| 3.2 缓释固体分散体的问题及展望 | 第16页 |
| 4 本文的立题依据及主要研究内容 | 第16-18页 |
| 第二章 生物样品中FM的HPLC测定方法 | 第18-37页 |
| 1 仪器与材料 | 第18-19页 |
| 1.1 仪器 | 第18页 |
| 1.2 试剂 | 第18-19页 |
| 1.3 动物 | 第19页 |
| 2 色谱条件 | 第19页 |
| 3 实验方法与结果 | 第19-35页 |
| 3.1 对照品溶液配制 | 第19页 |
| 3.2 空白生物样品的采集 | 第19页 |
| 3.3 生物样品的处理 | 第19-20页 |
| 3.4 方法学评价 | 第20-35页 |
| 4 讨论 | 第35-36页 |
| 4.1 最大吸收波长的确定 | 第35页 |
| 4.2 色谱条件的选择 | 第35页 |
| 4.3 去蛋白试剂的选择 | 第35-36页 |
| 5 小结 | 第36-37页 |
| 第三章 FMSSD药动学及组织分布研究 | 第37-53页 |
| 1 仪器与材料 | 第37-38页 |
| 1.1 仪器 | 第37-38页 |
| 1.2 试剂 | 第38页 |
| 1.3 动物 | 第38页 |
| 2 实验方法 | 第38-39页 |
| 2.1 色谱条件 | 第38页 |
| 2.2 大鼠体内药动学研究 | 第38-39页 |
| 2.3 小鼠体内组织分布研究 | 第39页 |
| 2.4 数据的处理 | 第39页 |
| 3 实验结果 | 第39-50页 |
| 3.1 大鼠体内药动学研究 | 第39-44页 |
| 3.2 小鼠体内组织分布研究 | 第44-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| 4.1 给药剂量和给药途径的选择 | 第50页 |
| 4.2 药动学相关参数意义 | 第50-51页 |
| 4.3 观察组织中FM分布方法的选择 | 第51-52页 |
| 5 小结 | 第52-53页 |
| 第四章 自制FMSSD与市售胶囊的生物等效性研究 | 第53-61页 |
| 1 仪器与材料 | 第53-54页 |
| 1.1 仪器 | 第53页 |
| 1.2 试剂 | 第53-54页 |
| 1.3 动物 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54-55页 |
| 2.1 色谱条件 | 第54页 |
| 2.2 大鼠体内生物等效性研究 | 第54页 |
| 2.3 数据的处理 | 第54-55页 |
| 3 实验结果 | 第55-59页 |
| 3.1 给药后FM的经时血药浓度 | 第55-56页 |
| 3.2 给药后的药动学参数计算结果 | 第56-57页 |
| 3.3 生物等效性评价 | 第57-59页 |
| 3.4 双单侧t检验及(1-2α)%置信区间 | 第59页 |
| 4 讨论 | 第59-60页 |
| 5 小结 | 第60-61页 |
| 第五章 FMSSD的药效学研究 | 第61-66页 |
| 1 仪器与材料 | 第61页 |
| 1.1 仪器 | 第61页 |
| 1.2 试剂 | 第61页 |
| 1.3 动物 | 第61页 |
| 2 实验方法 | 第61-62页 |
| 2.1 小鼠热板镇痛实验 | 第61-62页 |
| 2.2 小鼠醋酸扭体实验 | 第62页 |
| 2.3 数据处理 | 第62页 |
| 3 实验结果 | 第62-65页 |
| 3.1 小鼠给药后对热板法实验的影响 | 第62-64页 |
| 3.2 小鼠给药后对醋酸扭体实验的影响 | 第64-65页 |
| 4 小结与讨论 | 第65-66页 |
| 全文总结 | 第66-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读学位期间发表的研究论文目录 | 第76-77页 |
