中英文缩略词表 | 第7-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
1. 引言 | 第13-15页 |
2. 实验材料与仪器设备 | 第15-19页 |
2.1 实验材料 | 第15-18页 |
2.2 实验仪器 | 第18-19页 |
3. 实验方法 | 第19-29页 |
3.1 细胞复苏和培养 | 第19-20页 |
3.2 细胞传代 | 第20页 |
3.3 HepG 2细胞HBV core protein(HBc)稳定表达细胞系的构建 | 第20-23页 |
3.4 细胞SILAC标记和标记效率检测 | 第23-24页 |
3.5 细胞系HBc SILAC正反标记定量蛋白质组学样品制备 | 第24-25页 |
3.6 HBc相互作用蛋白的鉴定 | 第25-26页 |
3.7 HBc蛋白和MLX蛋白细胞荧光共定位 | 第26页 |
3.8 MLX蛋白染色质免疫共沉淀(ChIP) | 第26-29页 |
4. 实验结果 | 第29-44页 |
4.1. p3×Flag CMV14/HBc质粒和pMSCV-puro/HA-MLX质粒的构建 | 第29-30页 |
4.2. HepG 2 p3×Flag CMV14/HBc稳转细胞系和对照细胞系成功构建 | 第30-31页 |
4.3 HBc稳转细胞系细胞表型研究 | 第31-32页 |
4.4. HBc细胞和3×Flag对照细胞的SILAC标记效率研究 | 第32-33页 |
4.5. Pure null实验确定SILAC定量卡值研究 | 第33-34页 |
4.6. HBc细胞/3×Flag细胞SILAC正反标记总蛋白定量分析 | 第34-36页 |
4.7. HBc细胞/3×Flag细胞SILAC正反标记定量差异蛋白及功能分析 | 第36-38页 |
4.8. 标签标记HBc免疫共沉淀(CoIP LC-MS)鉴定HBc蛋白相互作用蛋白研究 | 第38-39页 |
4.9 HepG2细胞共转染HBc和MLX的荧光共定位研究 | 第39-41页 |
4.10. HepG 2细胞的染色质免疫共沉淀(ChIP)甲醛交联和超声碎裂条件的优化 | 第41-42页 |
4.11. MLX调控基因上游调控序列关联引物设计 | 第42-43页 |
4.12. MLX染色质免疫共沉淀调控结合DNA序列实时定量PCR研究 | 第43-44页 |
5. 讨论 | 第44-46页 |
6. 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-50页 |
综述:MLX转录调控网络研究进展 | 第50-66页 |
摘要 | 第50-51页 |
1. 前言 | 第51-52页 |
2. MLX转录网络发现及其组成 | 第52-53页 |
3. MLX基因、蛋白质和表达 | 第53-54页 |
4. MLX和Mondo家族蛋白的保守结构域 | 第54-56页 |
5. MLX转录网络的功能 | 第56-57页 |
6. MLX网络的转录靶基因 | 第57-58页 |
7. 依赖亚细胞定位的调节方式 | 第58-59页 |
8. 前景展望 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
附件一:HBc细胞/3×Flag细胞SILAC正反标记定量差异蛋白列表 | 第66-71页 |
附件二:乙肝病毒Core protein相互作用蛋白列表 | 第71-73页 |
个人简历 | 第73-75页 |
致谢 | 第75-76页 |