摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
综述 镰刀菌蓝光受体研究进展 | 第13-27页 |
1 光照对镰刀菌的调节 | 第14-19页 |
1.1 光诱导类胡萝卜素的合成 | 第15-16页 |
1.2 有性生殖和无性生殖 | 第16-17页 |
1.3 次生代谢 | 第17-19页 |
2 镰刀菌中的蓝光受体 | 第19-23页 |
2.1 White collar1 | 第19-21页 |
2.2 White collar2 | 第21-22页 |
2.3 Vivid | 第22-23页 |
3 蓝光受体对病原真菌致病性的调节 | 第23-25页 |
4 本论文研究的目的与意义 | 第25-27页 |
前言 | 第27-28页 |
第一节 光照对禾谷镰刀菌(F.asiaticum)影响的探究 | 第28-35页 |
1 引言 | 第28页 |
2 材料与方法 | 第28-29页 |
2.1 菌株和保存条件 | 第28页 |
2.2 光照对野生型菌株生长速率的影响 | 第28-29页 |
2.3 光照对野生型菌株生物量的影响 | 第29页 |
2.4 光照对野生型菌株分生孢子产生的影响 | 第29页 |
2.5 光照对蓝光受体基因表达的影响 | 第29页 |
3 结果与分析 | 第29-33页 |
3.1 光照对野生型菌株菌落形态的影响 | 第29-30页 |
3.2 光照对野生型体外生长的影响 | 第30-31页 |
3.3 光照对野生型菌株分生孢子产生的影响 | 第31-32页 |
3.4 野生型菌株中蓝光受体基因的表达 | 第32-33页 |
4 讨论 | 第33-35页 |
第二节 禾谷镰刀菌蓝光受体(Fawcl和Favvd)突变体的获得与鉴定 | 第35-51页 |
1 引言 | 第35页 |
2 材料与方法 | 第35-42页 |
2.1 CTAB法提取真菌基因组DNA | 第35-36页 |
2.2 RNA抽提 | 第36页 |
2.3 RNA反转录 | 第36-37页 |
2.4 大肠杆菌感受态细胞制备 | 第37-38页 |
2.5 转化片段的获得 | 第38页 |
2.6 突变体转化子的获得 | 第38-40页 |
2.7 转化子的筛选及鉴定 | 第40-42页 |
3 结果与分析 | 第42-50页 |
3.1 禾谷镰刀菌蓝光受体基因序列的克隆 | 第42-43页 |
3.2 生物信息学分析 | 第43-47页 |
3.3 禾谷镰刀菌蓝光受体基因突变的获得与鉴定 | 第47-50页 |
4 讨论 | 第50-51页 |
第三节 禾谷镰刀菌ΔFawcl、ΔFavvd突变体生长发育表型分析 | 第51-63页 |
1 引言 | 第51页 |
2 材料与方法 | 第51-52页 |
2.1 菌种和光照 | 第51页 |
2.2 有性生殖诱导 | 第51-52页 |
3 结果与分析 | 第52-61页 |
3.1 突变体与野生型菌落形态的比较 | 第52-55页 |
3.2 突变体与野生型营养生长的比较 | 第55-56页 |
3.3 突变体与野生型类胡萝卜素基因表达的比较 | 第56-57页 |
3.4 突变体与突变体黄色镰刀菌素基因表达的比较 | 第57-58页 |
3.5 突变体与野生型分生孢子产生的比较 | 第58页 |
3.6 突变体与野生型有性生殖比较 | 第58-61页 |
4 讨论 | 第61-63页 |
第四节 禾谷镰刀菌ΔFawcl、ΔFavvd突变体致病表型分析 | 第63-77页 |
1 引言 | 第63页 |
2 材料与方法 | 第63-66页 |
2.1 致病性的检测 | 第63-64页 |
2.2 疏水性检测 | 第64页 |
2.3 纤维素酶测定 | 第64-65页 |
2.4 玻璃纸穿透实验 | 第65页 |
2.5 DAB染色检测发病组织活性氧水平 | 第65-66页 |
3 结果与分析 | 第66-73页 |
3.0 突变体与野生型致病性的比较 | 第66-69页 |
3.1 疏水性比较 | 第69-70页 |
3.2 菌丝穿透能力比较 | 第70-71页 |
3.3 纤维素酶活性比较 | 第71页 |
3.4 ROS比较 | 第71-73页 |
3.5 DON毒素相关基因的比较 | 第73页 |
4 讨论 | 第73-77页 |
第五节 总结和展望 | 第77-79页 |
参考文献 | 第79-88页 |
附录1 本研究中所使用引物序列 | 第88-90页 |
附录2 培养基配方 | 第90-91页 |
致谢 | 第91-93页 |
个人简历 | 第93页 |