英文缩略词说明 | 第6-7页 |
摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
第1章 文献综述 | 第12-20页 |
1.1 子宫内膜炎致病原因及其影响 | 第12-13页 |
1.2 子宫内免疫机制 | 第13-17页 |
1.2.1 子宫的特异性免疫 | 第13-14页 |
1.2.2 子宫的非特异性免疫 | 第14-16页 |
1.2.3 激素 | 第16-17页 |
1.3 子宫内膜炎治疗方法 | 第17-19页 |
1.3.1 子宫灌洗 | 第17页 |
1.3.2 抗生素 | 第17-18页 |
1.3.3 激素类 | 第18页 |
1.3.4 中药类 | 第18页 |
1.3.5 其他方法 | 第18-19页 |
1.4 小结 | 第19-20页 |
第2章 引言 | 第20-22页 |
第3章 实验材料和方法 | 第22-38页 |
3.1 实验材料 | 第22-27页 |
3.1.1 实验动物 | 第22页 |
3.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
3.1.3 实验耗材 | 第23-24页 |
3.1.4 主要实验仪器 | 第24页 |
3.1.5 主要试剂和实验耗材 | 第24-27页 |
3.2 实验方法 | 第27-38页 |
3.2.1 子宫取样 | 第27页 |
3.2.2 子宫内膜细胞培养 | 第27-28页 |
3.2.3 子宫内膜细胞的免疫荧光鉴定 | 第28-29页 |
3.2.4 细胞活力的鉴定 | 第29页 |
3.2.5 不同浓度的LPS对子宫内膜上皮细胞活性的影响 | 第29-30页 |
3.2.6 不同浓度LPS刺激下子宫内膜上皮细胞产生的炎性因子 | 第30-33页 |
3.2.7 不同浓度LPS刺激下的子宫内膜上皮细胞炎性因子mRNA的表达量 | 第33-34页 |
3.2.8 NO试剂盒,ELISA,RT-PCR法检测不同浓度 17β-E2作用后炎性因炎性因子的表达变化 | 第34页 |
3.2.9 NO试剂盒,ELISA,RT-PCR法检测雌激素受体α拮抗剂加入后炎入后炎性因子的表达变化 | 第34-35页 |
3.2.10 JNK信号通路在E2调节子宫内膜上皮细胞炎症中的作用 | 第35-36页 |
3.2.11 数据统计分析 | 第36-38页 |
第4章 结果与分析 | 第38-54页 |
4.1 子宫内膜上皮细胞的原代培养 | 第38-40页 |
4.1.1 子宫内膜上皮细胞的分离纯化及培养 | 第38-39页 |
4.1.2 子宫内膜细胞的传代培养 | 第39-40页 |
4.2 子宫内膜上皮细胞的鉴定 | 第40-41页 |
4.3 不同浓度LPS对EECs活性的影响 | 第41-42页 |
4.4 不同浓度LPS对EECs NO、TNF-α、IL-1 表达的影响 | 第42-43页 |
4.5 RNA的完整性检测 | 第43-44页 |
4.6 不同浓度LPS对EECs NOS、TNF-α、IL-1m RNA表达的影响 | 第44页 |
4.7 不同时间不同浓度的 17β-E_2对EECs NO、TNF-α、IL-1 表达的影响 | 第44-47页 |
4.8 不同时间不同浓度的17β-E_2对EECs NOS、TNF-α、IL-1mRNA表达的影响 | 第47-49页 |
4.9 雌激素受体α抑制剂TAM对 17β-E2缓解EECs炎症的影响 | 第49-51页 |
4.9.1 加入TAM后NO、TNF-α、IL-1 的表达量 | 第49-50页 |
4.9.2 加入TAM后NOS、TNF-α、IL-1 mRNA表达量的变化 | 第50-51页 |
4.10 Western Blot检测JNK通路在 17β-E_2对子宫内膜上皮细胞炎症调节作用节作用中的作用 | 第51-54页 |
第5章 讨论 | 第54-58页 |
5.1 猪子宫内膜上皮细胞的培养 | 第54-55页 |
5.2 炎症模型的建立 | 第55-56页 |
5.3 雌激素对炎性因子的调节作用 | 第56页 |
5.4 JNK信号转导通路与雌激素对炎性因子的调控 | 第56-58页 |
第6章 结论 | 第58-60页 |
参考文献 | 第60-68页 |
致谢 | 第68页 |