| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 量子点 | 第13-15页 |
| 1.2.1 量子点的概念 | 第13页 |
| 1.2.2 量子点的的结构及光学性能 | 第13-15页 |
| 1.3 量子点的制备 | 第15-16页 |
| 1.4 量子点的毒性 | 第16-17页 |
| 1.5 量子点在生物及医学分析中的应用 | 第17-20页 |
| 1.5.1 应用于生物分子的检测 | 第17页 |
| 1.5.2 应用于生物芯片技术 | 第17-18页 |
| 1.5.3 应用于肿瘤细胞的检测 | 第18-19页 |
| 1.5.4 应用于活体标记和组织成像 | 第19页 |
| 1.5.5 应用于分析化学检测 | 第19-20页 |
| 1.6 异硫氰酸荧光素 | 第20-21页 |
| 1.6.1 异硫氰酸荧光素简介 | 第20页 |
| 1.6.2 异硫氰酸荧光素的结构及光学性能 | 第20-21页 |
| 1.7 异硫氰酸荧光素的应用 | 第21-22页 |
| 1.7.1 异硫氰酸荧光素应用于生物标记 | 第21页 |
| 1.7.2 异硫氰酸荧光素应用于细胞凋亡检测 | 第21-22页 |
| 1.7.3 异硫氰酸荧光素的其他应用 | 第22页 |
| 1.8 量子点标记病毒研究进展 | 第22-24页 |
| 1.9 细胞因子 | 第24-26页 |
| 1.9.1 细胞因子的概念 | 第24页 |
| 1.9.2 细胞因子的结构 | 第24-25页 |
| 1.9.3 细胞因子的功能 | 第25页 |
| 1.9.4 细胞因子的分类 | 第25-26页 |
| 1.10 本论文出发点,研究内容及意义 | 第26-28页 |
| 1.10.1 出发点 | 第26页 |
| 1.10.2 研究内容 | 第26-27页 |
| 1.10.3 研究意义 | 第27-28页 |
| 第2章 FITC和QDs标记病毒对A549细胞活性影响的比较 | 第28-40页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验部分 | 第29-32页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第29页 |
| 2.2.2 异硫氰酸荧光素的修饰 | 第29-30页 |
| 2.2.3 缓冲溶液的配制 | 第30页 |
| 2.2.4 细胞培养液的配置 | 第30页 |
| 2.2.5 H9N2的扩增 | 第30-31页 |
| 2.2.6 H9N2的纯化 | 第31页 |
| 2.2.7 病毒蛋白浓度测定 | 第31页 |
| 2.2.8 A549细胞的培养 | 第31页 |
| 2.2.9 H9N2的标记及细胞活性的测定 | 第31-32页 |
| 2.3 结果讨论 | 第32-38页 |
| 2.3.1 亲和素修饰异硫氰酸荧光素(FITC-Avidin)的紫外吸收光谱和荧光光谱 | 第32页 |
| 2.3.2 病毒蛋白浓度 | 第32页 |
| 2.3.3 纯FITC对A549细胞活性的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.4 FITC-Avidin对A549细胞活性的影响 | 第33页 |
| 2.3.5 FITC-Avidin和QDs对细胞活性影响的比较 | 第33-34页 |
| 2.3.6 不同浓度FITC-Avidin标记病毒对细胞活性的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.7 不同侵染时间下FITC标记H9N2对A549细胞活性的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.8 不同侵染时间下FITC标记和QDs标记H9N2对A549细胞活性影响的比较 | 第37-38页 |
| 2.4 结论 | 第38-40页 |
| 第3章 FITC和QDs标记H9N2对A549细胞因子分泌水平影响的比较 | 第40-48页 |
| 3.1 引言 | 第40-42页 |
| 3.2 实验部分 | 第42-45页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第42页 |
| 3.2.2 异硫氰酸荧光素的修饰 | 第42页 |
| 3.2.3 缓冲溶液的配制 | 第42-43页 |
| 3.2.4 细胞培养液的配置 | 第43页 |
| 3.2.5 H9N2的扩增 | 第43页 |
| 3.2.6 H9N2的纯化 | 第43页 |
| 3.2.7 病毒蛋白浓度测定 | 第43-44页 |
| 3.2.8 A549细胞的培养 | 第44页 |
| 3.2.9 H9N2的标记及细胞活性的测定 | 第44页 |
| 3.2.10 细胞因子分泌水平的测定 | 第44-45页 |
| 3.3 结果讨论 | 第45-47页 |
| 3.3.1 不同侵染时间FITC-Avidin对标记病毒诱导细胞因子分泌的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.2 FITC-Avidin和QDs标记病毒不同侵染时间诱导细胞因子分泌影响的比较 | 第46-47页 |
| 3.4 结论 | 第47-48页 |
| 第4章 不同粒径量子点标记病毒对细胞活性的影响 | 第48-54页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 实验部分 | 第48-50页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第48-49页 |
| 4.2.2 缓冲溶液的配制 | 第49页 |
| 4.2.3 细胞培养液的配置 | 第49页 |
| 4.2.4 H9N2的扩增 | 第49-50页 |
| 4.2.5 H9N2的纯化 | 第50页 |
| 4.2.6 病毒蛋白浓度测定 | 第50页 |
| 4.2.7 A549细胞的培养 | 第50页 |
| 4.2.8 H9N2的标记及细胞活性的测定 | 第50页 |
| 4.3 结果讨论 | 第50-52页 |
| 4.3.1 不同粒径量子点的表征 | 第51页 |
| 4.3.2 不同粒径不同浓度量子点对细胞活性的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.3 不同粒径不同浓度量子点标记H9N2对细胞活性的影响 | 第52页 |
| 4.4 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 硕士期间发表论文 | 第64页 |
