摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第一章 文献综述 | 第11-22页 |
1.1 水质概况 | 第11页 |
1.2 高氨氮废水的来源 | 第11-12页 |
1.3 氮素污染的危害 | 第12-13页 |
1.4 氮污染的控制技术 | 第13-18页 |
1.4.1 生物脱氮原理 | 第14页 |
1.4.2 生物脱氮传统工艺 | 第14-15页 |
1.4.3 生物脱氮的研究现状 | 第15-16页 |
1.4.4 生物转盘去氨氮工艺研究 | 第16-18页 |
1.5 异养硝化的研究进程 | 第18-19页 |
1.5.1 异养硝化细菌脱氮影响因素 | 第18-19页 |
1.6 活的但非可培养(VBNC)状态菌 | 第19-20页 |
1.7 复苏促进因子(Rpf)的研究进展 | 第20-21页 |
1.7.1 Rpf的发现 | 第20页 |
1.7.2 Rpf的作用机理 | 第20页 |
1.7.3 Rpf的应用 | 第20-21页 |
1.8 本论文的研究目的内容和意义 | 第21-22页 |
第二章 藤黄微球菌rpf基因的克隆与表达 | 第22-33页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 实验材料 | 第22-25页 |
2.2.1 菌株和质粒 | 第22页 |
2.2.2 实验试剂 | 第22-23页 |
2.2.3 主要仪器 | 第23-24页 |
2.2.4 培养基 | 第24页 |
2.2.5 数据库及软件 | 第24-25页 |
2.3 实验方法 | 第25-30页 |
2.3.1 Micrococcus luteus IAM 14879的复苏及培养 | 第25页 |
2.3.2 Micrococcus luteus IAM 14879基因组DNA的提取 | 第25-26页 |
2.3.3 rpf基因克隆 | 第26-29页 |
2.3.4 Rpf蛋白的分离纯化 | 第29页 |
2.3.5 蛋白质的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第29-30页 |
2.4 结果与讨论 | 第30-32页 |
2.4.1 Rpf蛋白基因的PCR扩增 | 第30-31页 |
2.4.2 重组质粒的构建转化与阳性克隆的鉴定 | 第31页 |
2.4.3 表达纯化目的蛋白 | 第31-32页 |
2.5 总结与讨论 | 第32-33页 |
第三章 高效氨氮降解菌的分离鉴定 | 第33-45页 |
3.1 引言 | 第33-34页 |
3.2 材料与方法 | 第34-37页 |
3.2.1 实验材料 | 第34页 |
3.2.2 培养基 | 第34-35页 |
3.2.3 菌株的富集、分离与筛选 | 第35页 |
3.2.4 菌株的形态鉴定 | 第35页 |
3.2.5 菌株的16S rDNA鉴定和系统发育树绘制 | 第35-36页 |
3.2.6 菌株的异养硝化和好氧反硝化能力 | 第36页 |
3.2.7 菌株的脱氮条件研究 | 第36-37页 |
3.3 结果与讨论 | 第37-44页 |
3.3.1 菌株的形态鉴定 | 第37-38页 |
3.3.2 16S rDNA序列同源性分析 | 第38-39页 |
3.3.3 菌株的生长曲线以及异养硝化-好氧反硝化能力 | 第39-42页 |
3.3.4 环境因素对菌株ZB612脱氮效率的影响 | 第42-44页 |
3.4 结论 | 第44-45页 |
第四章 生物转盘偶联低溶氧SBR脱氮工艺研究 | 第45-58页 |
4.1 现场中试水质 | 第45页 |
4.2 生物转盘设计 | 第45-47页 |
4.3 工艺流程和控制条件 | 第47-52页 |
4.3.1 中试工艺流程框图 | 第47-49页 |
4.3.2 工艺条件控制 | 第49-52页 |
4.4 现场中试试验研究 | 第52-57页 |
4.4.1 COD去除效果分析 | 第52-53页 |
4.4.2 NH_3-N去除效果分析 | 第53-54页 |
4.4.3 TN去除效果分析 | 第54-55页 |
4.4.4 生物转盘对污染物降解效果分析 | 第55-56页 |
4.4.5 污泥减量效果分析 | 第56-57页 |
4.5 小结 | 第57-58页 |
第五章 结论与展望 | 第58-60页 |
5.1 结论 | 第58-59页 |
5.2 展望 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
攻读学位期间取得的硏究成果 | 第66-67页 |