| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-17页 |
| 1 过氧化物酶体增殖剂激活受体(PPAR)基因简介 | 第11-14页 |
| 1.1 PPAR基因概述 | 第11页 |
| 1.2 畜禽PPARα基因的研究进展 | 第11-13页 |
| 1.2.1 PPARα基因的定位 | 第12页 |
| 1.2.2 PPARα基因多态性的研究 | 第12页 |
| 1.2.3 PPARα基因的表达 | 第12-13页 |
| 1.3 畜禽PPARγ基因的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3.1 PPARγ基因的定位 | 第13页 |
| 1.3.2 PPARγ基因的多态性研究 | 第13-14页 |
| 1.3.3 PPARγ基因的表达 | 第14页 |
| 2 分子标记及其在家禽育种中的应用 | 第14-15页 |
| 2.1 分子标记 | 第14页 |
| 2.2 单核苷酸标记(SNP)及其在家禽育种的应用 | 第14-15页 |
| 3 实时荧光定量PCR技术 | 第15-16页 |
| 3.1 实时荧光定量PCR技术的基本原理 | 第15页 |
| 3.2 实时荧光定量PCR技术在畜牧研究领域的应用 | 第15-16页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 第二章 PPARα基因多态性及其与金茅花鸡生长、屠宰以及肉质性状的关联分析 | 第17-38页 |
| 1 材料与方法 | 第18-23页 |
| 1.1 试验材料 | 第18-20页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.1.2 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 1.1.3 主要实验试剂 | 第19页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第19-20页 |
| 1.2 试验方法 | 第20-23页 |
| 1.2.1 鸡血液DNA的提取 | 第20页 |
| 1.2.2 金茅花鸡的屠宰 | 第20页 |
| 1.2.3 肉品质测定 | 第20-22页 |
| 1.2.4 引物设计 | 第22页 |
| 1.2.5 PCR-SSCP分析 | 第22-23页 |
| 2 数据分析及统计方法 | 第23-24页 |
| 2.1 相关软件 | 第23页 |
| 2.2 数据分析与统计方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 单倍型分析 | 第23页 |
| 2.2.2 关联分析 | 第23-24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-36页 |
| 3.1 鸡基因组DNA和PCR产物结果 | 第24-25页 |
| 3.1.1 基因组DNA的提取结果 | 第24页 |
| 3.1.2 引物PCR扩增效果检测 | 第24-25页 |
| 3.2 PPARα基因PCR-SSCP检测及测序结果 | 第25-26页 |
| 3.3 PPARα基因变异位点的连锁不平衡分析 | 第26-28页 |
| 3.4 PPARα基因单倍型分析 | 第28页 |
| 3.5 PPARα基因单倍型组合与金茅花鸡生长性状的相关分析 | 第28-36页 |
| 4 讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 PPARγ基因多态性及其与金茅花鸡生长、屠宰以及肉质性状的关联分析 | 第38-47页 |
| 1 材料与方法 | 第38页 |
| 2 数据分析与统计方法 | 第38-41页 |
| 2.1 群体基因频率、基因型频率的计算以及卡方检验 | 第38-39页 |
| 2.2 遗传多样性参数 | 第39页 |
| 2.3 引物设计 | 第39-40页 |
| 2.4 PCR-SSCP分析及测序分析 | 第40页 |
| 2.5 关联分析 | 第40-41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-45页 |
| 3.1 引物PCR扩增效果检测 | 第41页 |
| 3.2 PPARγ基因PCR-SSCP检测及测序结果分析 | 第41-42页 |
| 3.3 PPARγ基因在金茅花鸡群体中的遗传变异分析 | 第42页 |
| 3.4 PPARγ各基因型对金茅花鸡生长、屠宰以及肉质性状的关联分析 | 第42-45页 |
| 3.4.1 PPARγ基因各基因型对金茅花鸡生长性状的关联分析 | 第42页 |
| 3.4.2 PPARγ基因各基因型对金茅花鸡屠宰性状的关联分析 | 第42-44页 |
| 3.4.3 PPARγ基因各基因型对金茅花鸡肉质性状的关联分析 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 PPARα基因和PPARγ基因在金茅花鸡不同生长阶段表达规律的研究 | 第47-56页 |
| 1 材料与方法 | 第47-49页 |
| 1.1 试验材料 | 第47-48页 |
| 1.1.1 实验个体 | 第47页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第47页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第47-48页 |
| 1.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 1.2.1 主要试剂配制 | 第48页 |
| 1.2.2 鸡组织总RNA的提取和检测(Trizol法) | 第48页 |
| 1.2.3 引物设计 | 第48-49页 |
| 1.2.4 反转录 | 第49页 |
| 1.2.5 内参基因与目的基因的标准曲线及溶解曲线的绘制 | 第49页 |
| 1.2.6 实时荧光定量PCR | 第49页 |
| 1.3 统计分析 | 第49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-54页 |
| 2.1 RNA提取结果 | 第49-50页 |
| 2.2 PCR扩增目的基因和内参基因结果 | 第50页 |
| 2.3 目的基因的标准曲线和溶解曲线结果 | 第50-51页 |
| 2.4 金茅花鸡PPARα基因的表达规律 | 第51-52页 |
| 2.4.1 PPARα基因在不同组织中的表达差异 | 第51-52页 |
| 2.4.2 PPARα基因在同一组织不同生长阶段的表达差异 | 第52页 |
| 2.5 金茅花鸡PPARγ基因的表达规律 | 第52-54页 |
| 2.5.1 PPARγ基因在不同组织中的表达差异 | 第52-53页 |
| 2.5.2 PPARγ基因在同一组织不同生长阶段的表达差异 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-56页 |
| 3.1 PPARα基因的表达 | 第54页 |
| 3.2 PPARγ基因的表达 | 第54-56页 |
| 全文结论 | 第56-57页 |
| 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表学术论文 | 第65-66页 |
