海藻糖合成酶的固定化研究
| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-23页 |
| 1.1 海藻糖概述 | 第10-14页 |
| 1.1.1 海藻糖理化性质 | 第10页 |
| 1.1.2 海藻糖的生物学功能 | 第10-12页 |
| 1.1.3 海藻糖的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.4 海藻糖的生产 | 第13-14页 |
| 1.2 海藻糖合成酶概述 | 第14-18页 |
| 1.2.1 海藻糖合成酶的发现 | 第14-16页 |
| 1.2.2 海藻糖合成酶固定化研究现状 | 第16-18页 |
| 1.3 高分子分离膜载体 | 第18-20页 |
| 1.3.1 膜材料概述 | 第18页 |
| 1.3.2 聚丙烯腈膜的研究现状 | 第18-19页 |
| 1.3.3 高分子分离膜的制备工艺 | 第19-20页 |
| 1.3.4 高分子分离膜在固定化酶中的应用 | 第20页 |
| 1.4 课题研究意义及内容 | 第20-23页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第20-21页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-29页 |
| 2.1 材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 菌种和培养基 | 第23页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-29页 |
| 2.2.1 游离酶液制备 | 第24页 |
| 2.2.2 糖含量测定 | 第24页 |
| 2.2.3 蛋白含量测定及酶活定义 | 第24-25页 |
| 2.2.4 载体材料制备与预处理 | 第25页 |
| 2.2.5 酶固定化 | 第25-26页 |
| 2.2.6 固定化缓冲液选择 | 第26页 |
| 2.2.7 固定化载体选择 | 第26页 |
| 2.2.8 PAN膜载体制备工艺优化 | 第26-27页 |
| 2.2.9 固定化条件优化 | 第27页 |
| 2.2.10 固定化酶酶学性质分析 | 第27-28页 |
| 2.2.11 红外光谱测试 | 第28页 |
| 2.2.12 SED表面形态测试 | 第28页 |
| 2.2.13 膜机械性能测试 | 第28-29页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第29-46页 |
| 3.1 固定化缓冲液选择 | 第29-31页 |
| 3.2 固定化载体选择 | 第31-32页 |
| 3.3 PAN膜载体制备工艺优化 | 第32-38页 |
| 3.3.1 膜形态表征 | 第32页 |
| 3.3.2 不同聚合物浓度对固定化效果的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.3 不同蒸发时间对固定化效果的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.4 不同凝固浴温度对固定化效果的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.5 不同凝固浴浓度对固定化效果的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.6 不同膜厚度对固定化效果的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.7 小结 | 第37-38页 |
| 3.4 固定化条件优化 | 第38-41页 |
| 3.4.1 最适固定化pH | 第38页 |
| 3.4.2 最适固定化温度 | 第38-39页 |
| 3.4.3 最适固定化时间 | 第39页 |
| 3.4.4 最适固定化加酶量 | 第39-40页 |
| 3.4.5 固定化效率 | 第40页 |
| 3.4.6 傅里叶红外光谱图 | 第40-41页 |
| 3.4.7 小结 | 第41页 |
| 3.5 固定化酶学性质分析 | 第41-46页 |
| 3.5.1 固定化酶最适反应pH | 第41-42页 |
| 3.5.2 固定化酶最适反应温度 | 第42页 |
| 3.5.3 固定化酶最适反应初始底物浓度 | 第42-43页 |
| 3.5.4 金属离子对固定化酶的影响 | 第43-44页 |
| 3.5.5 固定化酶重复稳定性 | 第44页 |
| 3.5.6 固定化酶与游离酶反应进程 | 第44-45页 |
| 3.5.7 小结 | 第45-46页 |
| 主要结论与展望 | 第46-48页 |
| 主要结论 | 第46-47页 |
| 展望 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第53页 |
