| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 引言 | 第11-12页 |
| 1.2 I型干扰素 | 第12-13页 |
| 1.3 干扰素调节因子 4 | 第13-16页 |
| 1.3.1 IRF4的结构 | 第13页 |
| 1.3.2 IRF4介导B细胞的发育和分化 | 第13页 |
| 1.3.3 IRF4介导T细胞的发育和分化 | 第13-14页 |
| 1.3.4 IRF4介导各种免疫反应 | 第14-16页 |
| 1.4 干扰素调节因子 5 | 第16-22页 |
| 1.4.1 IRF5的结构 | 第16页 |
| 1.4.2 IRF5参与了TLR的信号通路 | 第16-18页 |
| 1.4.3 IRF5参与了CLR的信号通路 | 第18-19页 |
| 1.4.4 IRF5介导RLR信号通路 | 第19页 |
| 1.4.5 IRF5参与NLR信号通路 | 第19-20页 |
| 1.4.6 IRF5可以与转录因子IRF1，IRF3和IRF7结合 | 第20页 |
| 1.4.7 IRF5具有肿瘤抑制活性，并与细胞凋亡相关 | 第20-22页 |
| 第2章 斑马鱼IRF4同源基因的抗病毒作用 | 第22-36页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.2.1 细胞和病毒 | 第22-23页 |
| 2.2.2 实验载体与菌株 | 第23页 |
| 2.2.3 实验仪器和设备 | 第23-24页 |
| 2.2.4 试剂和耗材 | 第24页 |
| 2.2.5 主要溶液的配制 | 第24-25页 |
| 2.2.6 基因克隆与质粒构建 | 第25-28页 |
| 2.2.7 细胞的复苏 | 第28页 |
| 2.2.8 细胞的培养与传代 | 第28页 |
| 2.2.9 细胞的冻存 | 第28页 |
| 2.2.10 GCRV病毒和SVCV病毒在EPC细胞中的增殖 | 第28-29页 |
| 2.2.11 空斑法测定GCRV病毒和SVCV病毒滴度 | 第29页 |
| 2.2.12 病毒刺激实验 | 第29-30页 |
| 2.2.13 脂质体转染 | 第30页 |
| 2.2.14 总RNA提取 | 第30页 |
| 2.2.15 反转录实验 | 第30-31页 |
| 2.2.16 荧光定量PCR | 第31页 |
| 2.2.17 荧光素酶实验 | 第31-32页 |
| 2.3 结果 | 第32-34页 |
| 2.3.1 斑马鱼IRF4a、IRF4b及Mx基因的表达分析 | 第32-33页 |
| 2.3.2 斑马鱼IRF4a/IRF4b对DrIFNΦ1 和DrIFNΦ3 的启动子的激活作用 | 第33-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34-36页 |
| 第3章 斑马鱼IRF5的抗病毒作用 | 第36-46页 |
| 3.1 前言 | 第36-37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 动物与细胞 | 第37页 |
| 3.2.2 实验载体与菌株 | 第37页 |
| 3.2.3 主要仪器与设备 | 第37页 |
| 3.2.4 试剂与耗材 | 第37页 |
| 3.2.5 基因克隆及质粒构建 | 第37-38页 |
| 3.2.6 斑马鱼组织获取 | 第38页 |
| 3.2.7 IRF5抗病毒作用分析 | 第38-39页 |
| 3.3 结果 | 第39-44页 |
| 3.3.1 斑马鱼IRF5在不同组织中的表达变化 | 第39页 |
| 3.3.2 斑马鱼IRF5及Mx基因的表达分析 | 第39-40页 |
| 3.3.3 斑马鱼IRF5过表达后对下游基因的表达影响 | 第40-41页 |
| 3.3.4 斑马鱼IRF5，IRF5-△DBD和IRF5-△IAD对DrIFNΦ1 和DrIFNΦ3 的启动子的激活作用 | 第41-42页 |
| 3.3.5 斑马鱼IRF5的抗病毒作用分析 | 第42-44页 |
| 3.4 讨论 | 第44-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-59页 |
| 个人简介 | 第59-60页 |
