| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第一章 前言 | 第15-23页 |
| 1 抑制素与精子发生 | 第15-17页 |
| 1.1 雄性动物精子发生 | 第15页 |
| 1.2 影响雄性动物精子发生的因素 | 第15-16页 |
| 1.3 抑制素在雄性动物的分布 | 第16页 |
| 1.4 抑制素对雄性精子发生的影响 | 第16-17页 |
| 2 抑制素免疫的研究进展 | 第17-18页 |
| 2.1 抑制素免疫原 | 第17页 |
| 2.2 抑制素免疫对雄性动物的研究进展 | 第17-18页 |
| 3 抑制素基因免疫的研究进展 | 第18-21页 |
| 3.1 抑制素抗性基因疫苗的研究进展 | 第18-19页 |
| 3.1.1 单拷贝抑制素基因免疫效果的影响 | 第18页 |
| 3.1.2 双拷贝抑制素基因免疫效果的影响 | 第18-19页 |
| 3.1.3 影响抑制素基因免疫效果因素 | 第19页 |
| 3.2 抑制素非抗性基因疫苗的研究进展 | 第19-21页 |
| 3.2.1 非抗性基因疫苗的优点 | 第19-20页 |
| 3.2.2 口服减毒沙门氏菌载体传递疫苗优点 | 第20-21页 |
| 3.2.3 非抗性抑制素基因疫苗免疫研究进展 | 第21页 |
| 4 研究目的与意义 | 第21-23页 |
| 第二章 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠生殖器官发育的影响 | 第23-39页 |
| 1 材料与方法 | 第23-28页 |
| 1.1 实验菌种 | 第23页 |
| 1.2 实验动物 | 第23页 |
| 1.3 主要试剂和耗材 | 第23页 |
| 1.4 主要溶液和相关缓冲液 | 第23-24页 |
| 1.5 主要仪器设备 | 第24页 |
| 1.6 试验方法 | 第24-27页 |
| 1.6.1 细菌的活化与扩大培养 | 第24-25页 |
| 1.6.2 质粒的小提 | 第25页 |
| 1.6.3 质粒的酶切鉴定 | 第25页 |
| 1.6.4 实验分组及免疫程序 | 第25-26页 |
| 1.6.5 抗抑制素IgG抗体检测 | 第26页 |
| 1.6.6 脏器系数测定 | 第26页 |
| 1.6.7 精子悬液处理方法 | 第26页 |
| 1.6.8 大鼠睾丸组织切片制作 | 第26-27页 |
| 1.7 统计分析 | 第27-28页 |
| 2 结果 | 第28-36页 |
| 2.1 质粒鉴定结果 | 第28页 |
| 2.2 抑制素基因疫苗免疫后大鼠血清中抗体水平 | 第28-30页 |
| 2.3 抑制素基因疫苗免疫对大鼠体重的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 抑制素基因疫苗免疫对大鼠脏器系数的影响 | 第31-32页 |
| 2.5 抑制素基因疫苗免疫对大鼠附睾尾精子数和畸形率的影响 | 第32-34页 |
| 2.6 抑制素基因疫苗免疫对大鼠睾丸组织形态结构学的影响 | 第34-36页 |
| 3 分析与讨论 | 第36-37页 |
| 4 小结 | 第37-39页 |
| 第三章 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠内分泌激素水平的影响 | 第39-49页 |
| 1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 1.1 实验动物与菌种 | 第39页 |
| 1.2 主要试剂与耗材 | 第39页 |
| 1.3 主要实验仪器设备 | 第39-40页 |
| 1.4 实验方法 | 第40-41页 |
| 1.4.1 血清抑制素B测定 | 第40页 |
| 1.4.2 血清FSH测定 | 第40页 |
| 1.4.3 血清LH测定 | 第40页 |
| 1.4.4 血清T测定 | 第40-41页 |
| 1.5 统计分析 | 第41页 |
| 2 结果 | 第41-47页 |
| 2.1 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠血清抑制素B水平的影响 | 第41-42页 |
| 2.2 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠血清FSH的影响 | 第42-44页 |
| 2.3 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠血清LH的影响 | 第44-46页 |
| 2.4 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠血清T的影响 | 第46-47页 |
| 3 分析与讨论 | 第47-48页 |
| 4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 口服抑制素基因疫苗免疫对大鼠精子发生相关基因和蛋白的影响 | 第49-67页 |
| 1 材料与方法 | 第49-55页 |
| 1.1 实验动物与菌种 | 第49页 |
| 1.2 主要试剂 | 第49-50页 |
| 1.3 主要溶液和缓冲液 | 第50页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第50页 |
| 1.5 试验方法 | 第50-55页 |
| 1.5.1 引物的设计 | 第50-51页 |
| 1.5.2 总RNA提取 | 第51-52页 |
| 1.5.3 cDNA的合成 | 第52页 |
| 1.5.4 荧光定量检测基因mRNA水平表达水平 | 第52-53页 |
| 1.5.5 睾丸组织总蛋白提取 | 第53页 |
| 1.5.6 总蛋白含量测定 | 第53-54页 |
| 1.5.7 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第54页 |
| 1.5.8 转膜 | 第54页 |
| 1.5.9 免疫杂交 | 第54-55页 |
| 1.5.10 ECL显色 | 第55页 |
| 1.6 统计分析 | 第55页 |
| 2 结果 | 第55-63页 |
| 2.1 睾丸组织总RNA提取 | 第55-56页 |
| 2.2 精子发生相关基因引物扩增特异性 | 第56-57页 |
| 2.3 精子发生相关基因mRNA表达的溶解曲线和基因相对定量图 | 第57-59页 |
| 2.4 抑制素基因疫苗免疫对大鼠精子发生相关基因mRNA表达变化的影响 | 第59-60页 |
| 2.5 抑制素基因疫苗免疫对大鼠睾丸组织INHβb亚基蛋白表达的影响 | 第60-61页 |
| 2.6 抑制素基因疫苗免疫对大鼠睾丸组织SMAD4蛋白表达的影响 | 第61-62页 |
| 2.7 抑制素基因疫苗免疫对大鼠睾丸组织Vimentin蛋白表达的影响 | 第62-63页 |
| 3 分析与讨论 | 第63-65页 |
| 4 小结 | 第65-67页 |
| 第五章 结论与创新点 | 第67-69页 |
| 1.结论 | 第67页 |
| 2.创新点 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 致谢 | 第77-79页 |
| 作者简介 | 第79页 |
