| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-20页 |
| 1 ABA在植物逆境胁迫中的作用 | 第13-15页 |
| ·ABA提高植物的抗旱能力 | 第13-14页 |
| ·ABA提高植物的抗盐能力 | 第14页 |
| ·ABA提高植物的抗低温能力 | 第14-15页 |
| ·ABA调控基因在植物胁迫下的表达 | 第15页 |
| 2 植物miRNAs概述 | 第15-18页 |
| ·植物miRNA的产生及作用方式 | 第15-16页 |
| ·植物miRNA的生物学功能 | 第16-17页 |
| ·miRNA与植物的生长发育 | 第16-17页 |
| ·miRNA与植物逆境胁迫 | 第17页 |
| ·植物逆境胁迫下miRNAs在ABA信号转导中的作用 | 第17-18页 |
| ·miRNA与ABREs顺式作用元件 | 第17页 |
| ·miRNA与MYB类转录因子 | 第17-18页 |
| ·miRNA介导的ABA信号途径下的气孔开闭 | 第18页 |
| 3 本研究的主要思路 | 第18-20页 |
| 第一章 低夜温对番茄叶片ABA含量及气孔开度的影响 | 第20-25页 |
| 1 材料与方法 | 第20-22页 |
| ·试验材料与处理 | 第20页 |
| ·植物材料 | 第20页 |
| ·低夜温胁迫处理 | 第20页 |
| ·试验方法 | 第20-22页 |
| ·低夜温下番茄叶片ABA含量测定 | 第20-22页 |
| ·低夜温下番茄叶片气孔结构观察 | 第22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-24页 |
| ·低温胁迫下番茄叶片ABA含量变化 | 第22-23页 |
| ·低温胁迫下番茄叶片气孔结构观察 | 第23-24页 |
| 3 讨论 | 第24页 |
| 4 结论 | 第24-25页 |
| 第二章 低夜温下差异表达miRNA的初步筛选 | 第25-58页 |
| 1 材料与方法 | 第25-30页 |
| ·材料与处理 | 第25页 |
| ·试验方法 | 第25-30页 |
| ·RNA提取 | 第26页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第26-28页 |
| ·高通量测序 | 第28页 |
| ·数据分析 | 第28-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-54页 |
| ·基础分析 | 第30-33页 |
| ·数据质量及长度分布 | 第30-32页 |
| ·各样品间公共及特有序列统计 | 第32-33页 |
| ·标准信息分析 | 第33-43页 |
| ·Rfam比对 | 第33-34页 |
| ·miRBase比对 | 第34-36页 |
| ·已知miRNA表达谱分析 | 第36-37页 |
| ·重复序列比对 | 第37-39页 |
| ·小RNA分类注释 | 第39-42页 |
| ·新的miRNA预测 | 第42-43页 |
| ·miRNA碱基编辑 | 第43页 |
| ·已知miRNA分析 | 第43-54页 |
| ·靶基因预测 | 第43-46页 |
| ·差异表达miRNA分析 | 第46-51页 |
| ·差异表达miRNA模式聚类分析 | 第51-52页 |
| ·GO功能富集分析 | 第52-54页 |
| 3 讨论 | 第54-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 第三章 低夜温下差异表达miRNA的qRT-PCR验证 | 第58-64页 |
| 1 材料与方法 | 第58-60页 |
| ·试验材料与处理 | 第58页 |
| ·试验方法 | 第58-60页 |
| ·试验所需试剂 | 第58页 |
| ·仪器设备 | 第58页 |
| ·总RNA提取 | 第58-60页 |
| ·Real-time qRT-PCR | 第60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-62页 |
| 3 讨论 | 第62-63页 |
| ·qRT-PCR验证方法在miRNA表达分析中的应用 | 第62页 |
| ·miRNA在低夜温下的表达特性 | 第62-63页 |
| 4 结论 | 第63-64页 |
| 全文总结 | 第64-66页 |
| 主要创新点 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
