| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 1 绪论 | 第10-13页 |
| 2 藜芦人参合用对HepG2细胞的增毒评价 | 第13-21页 |
| ·实验材料 | 第13页 |
| ·试剂 | 第13页 |
| ·仪器 | 第13页 |
| ·实验方法 | 第13-15页 |
| ·CCK-8法检测细胞增殖 | 第13-14页 |
| ·LDH释放实验 | 第14页 |
| ·培养细胞的HE染色 | 第14-15页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第15页 |
| ·实验结果 | 第15-19页 |
| ·细胞抑制作用 | 第15-16页 |
| ·细胞LDH释放率 | 第16页 |
| ·细胞形态 | 第16-18页 |
| ·细胞凋亡 | 第18-19页 |
| ·讨论 | 第19-21页 |
| 3 人参对HepG2细胞CYPmRNA表达的调控作用 | 第21-27页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·试剂 | 第21页 |
| ·仪器 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-23页 |
| ·提取RNA | 第21-22页 |
| ·反转录 | 第22-23页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第23页 |
| ·实验结果 | 第23-26页 |
| ·讨论 | 第26-27页 |
| 4 肝药酶定量方法的建立 | 第27-47页 |
| ·实验材料 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-30页 |
| ·QconCAT质粒的生成 | 第27页 |
| ·QconCAT质粒的转化 | 第27-28页 |
| ·QconCAT蛋白的表达和纯化 | 第28-29页 |
| ·QconCAT肽段的标记效率 | 第29页 |
| ·QconCAT蛋白的精确定量 | 第29-30页 |
| ·方法的精密度和准确度 | 第30页 |
| ·标准曲线的制备 | 第30页 |
| ·混合人肝微粒体中的肝药酶丰度检测 | 第30页 |
| ·实验结果 | 第30-45页 |
| ·QconCAT蛋白的组成及纯化 | 第30-33页 |
| ·QconCAT肽段离子对的优化 | 第33-35页 |
| ·重标QconCAT肽段的标记效率 | 第35-37页 |
| ·轻标和重标QconCAT蛋白的定量 | 第37-38页 |
| ·方法的精密度和准确度 | 第38-39页 |
| ·QconCAT肽段的标准曲线 | 第39-43页 |
| ·混合人肝微粒体中目的蛋白的定量 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 附录 | 第52-63页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |