摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
1 引言 | 第12-17页 |
·阿特拉津和毒死蜱神经毒理学研究进展 | 第12-14页 |
·阿特拉津神经毒理学研究进展 | 第12-13页 |
·毒死蜱神经毒理学研究进展 | 第13-14页 |
·自噬在毒理学研究中的作用研究进展 | 第14-16页 |
·自噬的检测方法 | 第15-16页 |
·自噬在毒理学研究中的作用研究进展 | 第16页 |
·目的与意义 | 第16-17页 |
2 材料与方法 | 第17-26页 |
·试验鱼的驯养及暴露环境 | 第17页 |
·试验的总体设计 | 第17页 |
·暴露试验 | 第17页 |
·恢复试验 | 第17页 |
·样品的采集与处理 | 第17-18页 |
·主要仪器和试剂 | 第18-19页 |
·试验毒物 | 第18页 |
·主要仪器 | 第18页 |
·主要试剂 | 第18-19页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein 基因的克隆、原核表达、多克隆抗体的制备 | 第19-23页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein mRNA 基因序列的克隆与鉴定 | 第19-21页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein 基因在大肠杆菌中的表达、纯化和鉴定 | 第21-22页 |
·抗鲤鱼 LC3 和 dynein 多克隆抗体的制备 | 第22-23页 |
·检测项目与方法 | 第23-25页 |
·组织抗氧化功能相关指标的检测 | 第23页 |
·组织超微结构的观察 | 第23-24页 |
·脑自噬相关基因 mRNA 表达的检测 | 第24-25页 |
·鲤鱼 iNOS、LC3 和 dynein 蛋白表达情况的检测 | 第25页 |
·试验数据分析与统计 | 第25-26页 |
3 结果与分析 | 第26-36页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein 多克隆抗体的制备 | 第26-29页 |
·鲤鱼脑组织中总 RNA 的提取与鉴定 | 第26页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein 基因的 PCR 扩增结果 | 第26-27页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein mRNA 基因序列的测序结果 | 第27页 |
·重组表达载体的构建与鉴定 | 第27-28页 |
·融合蛋白的表达、鉴定与纯化 | 第28-29页 |
·多克隆抗体的制备和鉴定结果 | 第29页 |
·鲤鱼脑组织抗氧化功能的检测结果 | 第29-32页 |
·鲤鱼脑中一氧化氮水平的检测结果 | 第29-30页 |
·鲤鱼脑中诱导型一氧化氮合酶活性的检测结果 | 第30-31页 |
·鲤鱼脑中抗超氧阴离子活力的检测结果 | 第31页 |
·鲤鱼脑中抗羟自由基活力的检测结果 | 第31-32页 |
·鲤鱼脑组织超微结构观察结果 | 第32页 |
·鲤鱼脑 iNOS、LC3、dynein 和 TOR mRNA 和蛋白表达的检测结果 | 第32-36页 |
·实时 PCR 检测方法的建立 | 第32-33页 |
·阿特拉津和毒死蜱亚慢性暴露对鲤鱼脑 iNOS mRNA 和蛋白表达影响的检测结果 | 第33-34页 |
·阿特拉津和毒死蜱亚慢性暴露对鲤鱼脑 LC3 mRNA 和蛋白表达检测的结果 | 第34页 |
·阿特拉津和毒死蜱亚慢性暴露对鲤鱼脑 dynein mRNA 和蛋白表达检测结果 | 第34-35页 |
·阿特拉津和毒死蜱亚慢性暴露对鲤鱼脑 TOR mRNA 表达影响的检测结果 | 第35-36页 |
4 讨论 | 第36-42页 |
·鲤鱼 LC3 和 dynein 的克隆、表达及多克隆抗体的制备 | 第36-37页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露对鲤鱼脑组中抗氧化功能的影响 | 第37-39页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑中抗超氧阴离子和抗羟自由基活力的影响 | 第37-38页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑中对 NO 含量和 iNOS 活性的影响 | 第38页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑组中对 iNOS mRNA 和蛋白的表达的影响 | 第38-39页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑自噬相关基因的影响 | 第39-42页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑 LC3 表达的影响 | 第39-40页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑 dynein 表达的影响 | 第40-41页 |
·阿特拉津和毒死蜱单一及联合亚慢性暴露后对鲤鱼脑 TOR 表达的影响 | 第41-42页 |
5 结论 | 第42-43页 |
致谢 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-52页 |
附录 | 第52-59页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第59页 |