| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 一、文献综述 | 第12-32页 |
| 1 水稻矮杆的遗传及相关基因的研究现状 | 第12-15页 |
| ·水稻矮化基因的遗传学研究 | 第12页 |
| ·已克隆的水稻矮化基因的研究 | 第12-15页 |
| 2 生长素生物合成对植物株型的调控 | 第15-21页 |
| ·吲哚乙酸的生物合成 | 第16-19页 |
| ·IAA从头合成的色氨酸途径 | 第16-18页 |
| ·IAA从头合成的非色氨酸途径 | 第18页 |
| ·植物IAA合成的重要基因 | 第18-19页 |
| ·植物色氨酸与生长激素的生物合成对植物株型的调控 | 第19-21页 |
| 3 水稻黄化的研究现状 | 第21-25页 |
| ·水稻黄化的生理研究 | 第21页 |
| ·叶色突变的遗传 | 第21-23页 |
| ·水稻黄化基因的遗传研究 | 第23-25页 |
| 4 叶绿体形成与叶片黄化的关系研究进展 | 第25-32页 |
| ·叶绿体的形态结构 | 第25-26页 |
| ·叶绿体合成相关突变体的研究及现状 | 第26-27页 |
| ·水稻叶绿体发育过程及研究现状 | 第27-28页 |
| ·叶绿体形成分子机制的研究 | 第28-32页 |
| ·叶绿体发育基因的表达与调控机制 | 第28-29页 |
| ·叶绿体蛋白转运机制研究 | 第29-32页 |
| 二、实验材料和方法 | 第32-46页 |
| 1 实验材料 | 第32-35页 |
| ·实验水稻品种 | 第32页 |
| ·菌株与载体 | 第32页 |
| ·主要试剂 | 第32-33页 |
| ·主要仪器设备 | 第33页 |
| ·培养基成分 | 第33-35页 |
| ·细菌培养基成分 | 第33-34页 |
| ·用于水稻组织培养的培养基 | 第34-35页 |
| 2 实验方法 | 第35-46页 |
| ·石蜡切片方法 | 第35-36页 |
| ·扫描电镜观察 | 第36-38页 |
| ·透射电镜切片制作 | 第38-40页 |
| ·色氨酸含量的测定 | 第40-41页 |
| ·生长素含量的测定 | 第41-42页 |
| ·纤维素含量测定 | 第42-43页 |
| ·实验步骤 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-43页 |
| ·DNA提取 | 第43页 |
| ·水稻材料RNA的提取 | 第43-44页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第44-46页 |
| 三、结果与分析 | 第46-67页 |
| 1 性状调查结果 | 第47-49页 |
| 2 组织、细胞学观察 | 第49-52页 |
| ·石蜡切片观察节间细胞长度 | 第49-50页 |
| ·透射电子显微镜观察亚细胞结构 | 第50页 |
| ·扫描电子显微镜观察植株茎秆横切面维管束组织 | 第50-52页 |
| 3 机械强度和纤维素含量测定结果 | 第52-54页 |
| ·yd1和WT箭叶机械强度的测定 | 第52页 |
| ·yd1和WT茎秆和箭叶纤维素含量的测定 | 第52-54页 |
| 4 基因的精细定位 | 第54-57页 |
| 5 LOC_Os09g08130在突变体中的转录产物cDNAs和编码蛋白序列分析 | 第57-62页 |
| ·扩增突变体和野生型LOC_Os09g08130基因的cds序列 | 第57-58页 |
| ·将突变体和野生型回收片段连接产物测序比对结果 | 第58-61页 |
| ·测序结果的氨基酸序列分析 | 第61-62页 |
| 6 Trp根培互补实验 | 第62-64页 |
| 7 激素测定结果 | 第64-67页 |
| 四、讨论 | 第67-72页 |
| 1 YD1的分子机制的重要性 | 第67-68页 |
| 2 yd1突变体黄化机制的探讨 | 第68页 |
| 3 突变体yd1矮化的分子机制的推测 | 第68-69页 |
| 4 黄化、矮化突变性状的出现是不同基因的可能性 | 第69-71页 |
| 5 后续研究设想 | 第71-72页 |
| ·转基因功能互补和干涉实验 | 第71页 |
| ·蛋白YD1介导的色氨酸生物合成的分子机制 | 第71-72页 |
| ·该基因转录水平的时空表达 | 第71页 |
| ·转录组分析 | 第71页 |
| ·绿色荧光(GFP)融合蛋白的亚细胞定位 | 第71页 |
| ·蛋白YD1的酶活性的体外测定 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-83页 |
| 致谢 | 第83-87页 |