| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略语表 | 第12-14页 |
| 第一部分 前言 | 第14-34页 |
| 1 课题的提出 | 第14-15页 |
| 2 草坪植物转基因育种的研究进展 | 第15-32页 |
| 2．1 草坪植物的育种实践与应用 | 第15-17页 |
| 2．2 草坪植物组织培养的研究进展 | 第17-19页 |
| 2．3 植物的遗传转化方法 | 第19-23页 |
| 2．3．1 基因枪法 | 第19-20页 |
| 2．3．2 农杆菌介导法 | 第20页 |
| 2．3．3 PEG法 | 第20-21页 |
| 2．3．4 电激法 | 第21页 |
| 2．3．5 碳化硅纤维介导转化法 | 第21页 |
| 2．3．6 花粉管通道法 | 第21-22页 |
| 2．3．7 子房注射法 | 第22页 |
| 2．3．8 其它方法 | 第22-23页 |
| 2．4 植物遗传转化中存在的问题及对策 | 第23-26页 |
| 2．4．1 转基因沉默及其对策 | 第23-25页 |
| 2．4．2 转基因的效率问题 | 第25页 |
| 2．4．3 转基因植物的安全性问题 | 第25-26页 |
| 2．5 草坪植物遗传转化的研究进展 | 第26-32页 |
| 2．5．1 表达载体的构建 | 第27页 |
| 2．5．2 草坪植物转基因中常用的标记基因 | 第27-28页 |
| 2．5．3 抗除草剂基因工程 | 第28-31页 |
| 2．5．4 抗病基因工程 | 第31-32页 |
| 2．5．5 抗非生物胁迫基因工程 | 第32页 |
| 3 研究目的及意义 | 第32-34页 |
| 第二部分 高羊茅组织培养与植株高频再生 | 第34-44页 |
| 1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 1．1 材料 | 第34页 |
| 1．2 方法 | 第34-36页 |
| 1．2．1 高羊茅种子的处理 | 第34页 |
| 1．2．2 愈伤组织诱导 | 第34-35页 |
| 1．2．3 愈伤组织分化 | 第35页 |
| 1．2．4 数据统计 | 第35页 |
| 1．2．5 均匀设计试验与统计分析 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-40页 |
| 2．1 愈伤组织诱导的结果观测 | 第36-37页 |
| 2．2 数据处理与分析 | 第37-39页 |
| 2．3 愈伤组织诱导的影响因素 | 第39页 |
| 2．4 试验验证 | 第39页 |
| 2．5 愈伤组织分化与植株再生 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-44页 |
| 3．1 均匀设计应用于植物组织培养研究的可行性 | 第40-41页 |
| 3．2 外植体消毒处理方法对愈伤组织诱导的影响 | 第41-42页 |
| 3．3 影响高羊茅愈伤组织诱导及分化的因素 | 第42-44页 |
| 第三部分 马蹄金组织培养植株再生体系的优化 | 第44-56页 |
| 1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 1．1 材料 | 第44页 |
| 1．2 方法 | 第44-46页 |
| 1．2．1 马蹄金无菌苗的培养 | 第44页 |
| 1．2．2 愈伤组织诱导 | 第44页 |
| 1．2．3 愈伤组织分化 | 第44-45页 |
| 1．2．4 再生植株的生根培养 | 第45页 |
| 1．2．5 数据统计 | 第45页 |
| 1．2．6 正交设计试验与统计分析 | 第45-46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-54页 |
| 2．1 愈伤组织诱导的结果观测 | 第46-47页 |
| 2．2 不同生长调节剂对马蹄金子叶愈伤组织诱导的影响 | 第47-48页 |
| 2．3 不同生长调节剂对马蹄金叶片愈伤组织诱导的影响 | 第48-49页 |
| 2．4 不同生长调节剂对马蹄金叶柄愈伤组织诱导的影响 | 第49-50页 |
| 2．5 不同生长调节剂对马蹄金下胚轴愈伤组织诱导的影响 | 第50-51页 |
| 2．6 愈伤组织分化 | 第51-53页 |
| 2．6．1 数据处理与分析 | 第51-52页 |
| 2．6．2 马蹄金愈伤组织分化的影响因素 | 第52-53页 |
| 2．6．3 试验验证 | 第53页 |
| 2．7 愈伤组织的诱导、分化及再生过程 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-56页 |
| 3．1 正交设计应用于植物组织培养研究的可行性 | 第54页 |
| 3．2 不同生长调节剂对马蹄金愈伤组织诱导的作用与调控 | 第54-56页 |
| 第四部分 外源基因的转化与鉴定 | 第56-72页 |
| 1 材料与方法 | 第56-64页 |
| 1．1 植物材料 | 第56页 |
| 1．2 菌株和质粒 | 第56-57页 |
| 1．3 Bar基因 | 第57页 |
| 1．4 主要仪器及试剂来源 | 第57页 |
| 1．5 方法 | 第57-64页 |
| 1．5．1 愈伤组织对 PPT和抗生素的敏感性试验 | 第57-58页 |
| 1．5．2 植物 DNA提取方法 | 第58-60页 |
| 1．5．3 质粒 DNA的小量提取 | 第60-61页 |
| 1．5．4 农杆菌的转化 | 第61-63页 |
| 1．5．5 抗性愈伤组织的分化与再生 | 第63页 |
| 1．5．6 转 Bar基因植株的PCR检测 | 第63-64页 |
| 1．5．7 转化植株的除草剂抗性鉴定 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-69页 |
| 2．1 愈伤组织对 PPT和抗生素的敏感性 | 第64-65页 |
| 2．2 不同转化方式对农杆菌转化效果的影响 | 第65-66页 |
| 2．3 优化的农杆菌转化实验路线 | 第66-67页 |
| 2．4 植物总 DNA提取 | 第67页 |
| 2．5 转Bar基因植株的 PCR检测 | 第67-68页 |
| 2．6 转化植株的除草剂抗性鉴定 | 第68-69页 |
| 3 讨论 | 第69-72页 |
| 3．1 PPT和抗生素对愈伤组织的预筛选 | 第69页 |
| 3．2 影响农杆菌转化的内在因素 | 第69-70页 |
| 3．3 正交设计用于农杆菌浸染条件优化的可行性 | 第70-71页 |
| 3．4 转化体系的进一步完善 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
