| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 前言 | 第11-13页 |
| 第二章 研究方法与实验过程 | 第13-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-15页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要试剂配制 | 第14页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第14-15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-16页 |
| 2.2.1 动物分组 | 第15页 |
| 2.2.2 大鼠脓毒症模型的制备及颈内静脉置管 | 第15页 |
| 2.2.3 血流动力学监测 | 第15页 |
| 2.2.4 脓毒症大鼠模型评估及给药 | 第15-16页 |
| 2.2.5 标本采集 | 第16页 |
| 2.3 肺、肠组织病理切片的制备 | 第16-17页 |
| 2.4 大鼠血清CA、肺组织NF-κB、TNF-α、肠组织DAO、i-FABP水平测定 | 第17-18页 |
| 2.4.1 ELISA 试剂盒 | 第17页 |
| 2.4.2 检测前准备工作 | 第17页 |
| 2.4.3 操作步骤 | 第17-18页 |
| 2.5 左肺脏组织湿干重（W/D)比率、肺系数、肺水含量测定 | 第18页 |
| 2.6 BCA法测量肺泡灌洗液中蛋白含量 | 第18-19页 |
| 2.7 Western Blot法检测肺脏中NF-κB和TLR4蛋白的表达水平 | 第19-22页 |
| 2.7.1 提取肺组织蛋白 | 第19页 |
| 2.7.2 BCA法测肺组织蛋白浓度 | 第19-20页 |
| 2.7.3 蛋白质变性 | 第20页 |
| 2.7.4 SDS-PAGE电泳 | 第20-21页 |
| 2.7.5 转模 | 第21页 |
| 2.7.6 封闭 | 第21页 |
| 2.7.7 孵育一抗 | 第21-22页 |
| 2.7.8 孵育二抗 | 第22页 |
| 2.7.9 ECL、显影及曝光 | 第22页 |
| 2.7.10 凝胶图象分析 | 第22页 |
| 2.8 统计学分析 | 第22-23页 |
| 2.9 实验技术路线图 | 第23-25页 |
| 2.9.1 脓毒症模型建立及血浆儿茶酚胺和炎症因子水平技术路线图 | 第23-24页 |
| 2.9.2 艾司洛尔对脓毒症大鼠肺脏保护的实验技术路线图 | 第24-25页 |
| 第三章 结果 | 第25-38页 |
| 3.1 血清CA水平变化 | 第25-26页 |
| 3.2 肺组织NF-κB水平变化 | 第26-27页 |
| 3.3 肺组织NF-κB、TLR4蛋白表达变化 | 第27-28页 |
| 3.4 血清TNF-α 水平变化 | 第28-29页 |
| 3.5 肺组织湿重/干重、肺系数、肺水含量、肺泡灌洗液蛋白含量水平 | 第29-33页 |
| 3.6 肠道组织DAO水平 | 第33-34页 |
| 3.7 肠道组织i-FABP水平 | 第34-35页 |
| 3.8 肺组织病理改变 | 第35-36页 |
| 3.9 肠道组织病理改变 | 第36-37页 |
| 3.10 各组大鼠血流动力学变化及7天生存情况 | 第37-38页 |
| 第四章 讨论 | 第38-42页 |
| 4.1 脓毒症模型建立 | 第38页 |
| 4.2 脓毒症与儿茶酚胺 | 第38-39页 |
| 4.3 脓毒症与TLR、NF-κ B | 第39页 |
| 4.4 脓毒症与TNF-α | 第39-40页 |
| 4.5 NF-κB、肺组织（W/D）、肺系数、肺水含量、肺组织病理变化与肺损 | 第40-41页 |
| 4.6 DAO、i-FABP、肠组织病理变化与肠损伤 | 第41-42页 |
| 第五章 结论 | 第42-43页 |
| 5.1 主要结论 | 第42页 |
| 5.2 不足与展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 综述 | 第47-53页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 英文缩略词表 | 第53-54页 |
| 在学期间的研究成果 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
