| Ⅰ 综述:非甾体类抗炎药与消化道肿瘤 | 第1-24页 |
| Ⅰ 1 摘要:非甾体类抗炎药与消化道肿瘤 | 第12页 |
| Ⅰ 2 引言 | 第12-13页 |
| Ⅰ 3 NSAIDs对结肠癌的预防作用 | 第13-14页 |
| Ⅰ 4 NSAIDs对食管癌的预防作用 | 第14-15页 |
| Ⅰ 4.1 对食管鳞癌的预防作用 | 第14页 |
| Ⅰ 4.2 对食管腺癌的预防作用 | 第14-15页 |
| Ⅰ 4.3 对贲门腺癌的预防作用 | 第15页 |
| Ⅰ 5 NSAIDs对其他肿瘤的预防作用 | 第15页 |
| Ⅰ 6 COX-2与NSAIDs的抗肿瘤作用 | 第15-17页 |
| Ⅰ 7 小结 | 第17页 |
| Ⅰ 8 参考文献 | 第17-24页 |
| Ⅱ 全文摘要 | 第24-33页 |
| Ⅱ 1 中文摘要:食管上皮细胞的COX-2表达、调控与细胞永生化及丝裂霉素C抗性 | 第24-27页 |
| Ⅱ 1.1 目的与方法 | 第24页 |
| Ⅱ 1.2 主要结果与结论 | 第24-27页 |
| Ⅱ 2 ABSTRACT:THE EXPRESSION AND REGULATION OF COX-2 IN ESOPHAGEAL EPITHELIAL CELLS AND ITS FUNCTION IN IMMORTALIZATION AND MITOMYCIN C RESISTANCE | 第27-33页 |
| Ⅱ 2.1 Aims and methods | 第27-28页 |
| Ⅱ 2.2 Key results and conclusions | 第28-33页 |
| Ⅲ 研究背景 | 第33-37页 |
| Ⅲ 1 国内外研究现状 | 第33页 |
| Ⅲ 2 河南高发区食管癌预防的探索 | 第33页 |
| Ⅲ 3 PGE_2、COX与食管癌的预防 | 第33-34页 |
| Ⅲ 4 COX-2抑制剂与其他NSAIDs的抗肿瘤作用 | 第34-35页 |
| Ⅲ 5 COX-2表达调控机制的探讨 | 第35页 |
| Ⅲ 6 研究目的与手段 | 第35-37页 |
| Ⅳ 食管癌组织中COX-2的表达及其意义 | 第37-43页 |
| Ⅳ 1 中英文摘要 | 第37-38页 |
| Ⅳ 1.1 摘要:食管癌组织中COX-2的表达及其意义 | 第37页 |
| Ⅳ 1.2 ABSTRACT:Increased expression of COX-2 protein in human esophageal carcinoma | 第37-38页 |
| Ⅳ 2 引言 | 第38-39页 |
| Ⅳ 3 材料和方法 | 第39-40页 |
| Ⅳ 3.1 研究材料 | 第39页 |
| Ⅳ 3.2 免疫组织化学检查 | 第39-40页 |
| Ⅳ 4 结果 | 第40-41页 |
| Ⅳ 4.1 COX-2在ESC中的表达 | 第40页 |
| Ⅳ 4.2 COX-2表达与ESC恶性程度及淋巴结转移的关系 | 第40-41页 |
| Ⅳ 5 讨论 | 第41-43页 |
| Ⅴ 血清浓度对不同食管癌细胞株COX-2表达和细胞生长的影响 | 第43-60页 |
| Ⅴ 1 中英文摘要 | 第43-45页 |
| Ⅴ 1.1 摘要:血清浓度对不同食管癌细胞株COX-2表达和细胞生长的影响 | 第43-44页 |
| Ⅴ 1.2 ABSTRACT:Effect of serum concentrations on COX-2 expression and cell growth in two EC cell lines | 第44-45页 |
| Ⅴ 2 引言 | 第45-46页 |
| Ⅴ 3 材料与方法 | 第46-50页 |
| Ⅴ 3.1 细胞准备 | 第46页 |
| Ⅴ 3.2 TGF-β受体在食管癌细胞株EC-109和EC-18的表达 | 第46-48页 |
| Ⅴ 3.3 食管癌细胞的梯度浓度血清培养 | 第48页 |
| Ⅴ 3.4 MTT法分析食管癌细胞生长 | 第48页 |
| Ⅴ 3.5 梯度血清浓度培养下食管癌细胞的COX-2 mRNA表达 | 第48-50页 |
| Ⅴ 3.6 梯度血清浓度培养下食管癌细胞的COX-2蛋白质表达 | 第50页 |
| Ⅴ 3.7 统计学处理 | 第50页 |
| Ⅴ 4 结果 | 第50-52页 |
| Ⅴ 4.1 TGF-βⅠ、Ⅱ型受体的Western Blotting检测 | 第50页 |
| Ⅴ 4.2 两种食管癌细胞在不同血清浓度条件下的生长情况 | 第50-51页 |
| Ⅴ 4.3 COX-2的mRNA和蛋白表达 | 第51-52页 |
| Ⅴ 5 讨论 | 第52-60页 |
| Ⅵ TGF-β1与成纤维细胞的相互作用影响食管癌细胞COX-2表达 | 第60-72页 |
| Ⅵ 1 中英文摘要 | 第60-62页 |
| Ⅵ 1.1 摘要:TGF-β_1与成纤维细胞的相互作用影响食管癌细胞COX-2表达 | 第60-61页 |
| Ⅵ 1.2 ABSTRACT:Expression of COX-2 in EC cells was affected by the interaction between TGF-β_1 and fibroblast | 第61-62页 |
| Ⅵ 2 引言 | 第62-63页 |
| Ⅵ 3 材料与方法 | 第63-65页 |
| Ⅵ 3.1 细胞准备 | 第63页 |
| Ⅵ 3.2 TGF-β受体在食管癌细胞株EC-109和EC-18的表达 | 第63页 |
| Ⅵ 3.3 条件培养基FS液和FSTB液的制备 | 第63页 |
| Ⅵ 3.4 实验分组 | 第63页 |
| Ⅵ 3.5 MTT法检测不同浓度TGF-β_1对食管癌细胞生长的影响 | 第63-64页 |
| Ⅵ 3.6 总RNA抽提及cDNA第1链合成 | 第64页 |
| Ⅵ 3.7 PCR反应 | 第64页 |
| Ⅵ 3.8 蛋白质的抽提与浓度测定 | 第64页 |
| Ⅵ 3.9 Western Blotting分析 | 第64页 |
| Ⅵ 3.10 统计学处理 | 第64-65页 |
| Ⅵ 4 结果 | 第65-66页 |
| Ⅵ 4.1 TGF-βⅠ、Ⅱ受体的Western Blotting检测 | 第65页 |
| Ⅵ 4.2 MTT方法检测不同浓度TGF-β_1对食管癌细胞生长的影响 | 第65页 |
| Ⅵ 4.3 不同条件培养基对EC-18和ECa-109细胞COX-2表达的影响 | 第65-66页 |
| Ⅵ 5 讨论 | 第66-72页 |
| Ⅶ 食管上皮细胞的永生化与COX-2表达调控 | 第72-109页 |
| Ⅶ 1 中英文摘要 | 第72-75页 |
| Ⅶ 1.1 摘要:食管上皮细胞的永生化与COX-2表达调控 | 第72-73页 |
| Ⅶ 1.2 ABSTRACT:Esophageal epithelial cell immortalization and the regulation of COX-2 expression | 第73-75页 |
| Ⅶ 2 引言 | 第75-77页 |
| Ⅶ 3 材料与方法 | 第77-84页 |
| Ⅶ 3.1 原代食管上皮培养的取材 | 第77页 |
| Ⅶ 3.2 食管上皮细胞原代培养的建立 | 第77-78页 |
| Ⅶ 3.3 不同培养条件下正常食管上皮与食管癌细胞COX-2表达的检测 | 第78页 |
| Ⅶ 3.4 感受态大肠杆菌的制备 | 第78-79页 |
| Ⅶ 3.5 HPV-16-E_6E_7逆转录病毒载体来源 | 第79页 |
| Ⅶ 3.6 细菌的转化 | 第79页 |
| Ⅶ 3.7 重组质粒载体的筛选 | 第79页 |
| Ⅶ 3.8 小量质粒DNA的提取 | 第79-80页 |
| Ⅶ 3.9 pLXSN-E_6E_7及pLXSN的限制性酶切反应 | 第80页 |
| Ⅶ 3.10 质粒DNA的大量制备和鉴定 | 第80页 |
| Ⅶ 3.11 脂质体介导pLXSN-E_6E_7和pLXSN转染病毒包装细胞 | 第80-81页 |
| Ⅶ 3.12 转染细胞的筛选 | 第81页 |
| Ⅶ 3.13 病毒滴度的测定 | 第81页 |
| Ⅶ 3.14 pLXSN-E_6E_7、pLXSN转染正常食管上皮细胞 | 第81页 |
| Ⅶ 3.15 NIH hTERT转染 | 第81-82页 |
| Ⅶ 3.16 总RNA的抽提 | 第82页 |
| Ⅶ 3.17 总RNA含量及纯度检测 | 第82页 |
| Ⅶ 3.18 总RNA完整性检测 | 第82页 |
| Ⅶ 3.19 cDNA第1链的合成 | 第82页 |
| Ⅶ 3.20 转染细胞HPV-16-E_6和hTERT的mRNA检测 | 第82页 |
| Ⅶ 3.21 转录PCR产物的检测 | 第82-83页 |
| Ⅶ 3.22 蛋白质的抽提 | 第83页 |
| Ⅶ 3.23 蛋白浓度测定 | 第83页 |
| Ⅶ 3.24 NECA_6及转染HPV-16-E_6E_7(NECA_6-E_6E_7)，HPV-16-E_6E_7-hTERT(NECA_6-E_6E_7-hTERT)后COX-2表达与VEGF、Id-1、Bcl-2、P53、Rb、和P16等基因表达的关系 | 第83页 |
| Ⅶ 3.25 统计学处理 | 第83-84页 |
| Ⅶ 4 结果 | 第84-86页 |
| Ⅶ 4.1 食管上皮细胞原代培养的建立 | 第84页 |
| Ⅶ 4.2 不同培养条件下正常食管上皮与食管癌细胞COX-2表达 | 第84页 |
| Ⅶ 4.3 pLXSNE_6E_7及pLXSN的限制性酶切 | 第84页 |
| Ⅶ 4.4 转染细胞HPV-16-E_6和hTERT的mRNA检测 | 第84页 |
| Ⅶ 4.5 COX-2和Id-1表达 | 第84-85页 |
| Ⅶ 4.6 VEGF表达 | 第85页 |
| Ⅶ 4.7 P16表达 | 第85页 |
| Ⅶ 4.8 P53表达 | 第85-86页 |
| Ⅶ 4.9 Rb表达 | 第86页 |
| Ⅶ 4.10 Bcl-2表达 | 第86页 |
| Ⅶ 5 讨论 | 第86-109页 |
| Ⅶ 5.1 永生化食管上皮的体外培养条件选择与COX-2表达 | 第86-87页 |
| Ⅶ 5.2 HPV-16-E_6E_7与食管上皮永生化 | 第87-88页 |
| Ⅶ 5.3 hTERT转染与食管上皮永生化 | 第88-89页 |
| Ⅶ 5.4 P53与食管上皮永生化及COX-2表达 | 第89-90页 |
| Ⅶ 5.5 Rb与细胞永生化及COX-2表达 | 第90-91页 |
| Ⅶ 5.6 P16与食管上皮永生化及COX-2表达 | 第91页 |
| Ⅶ 5.7 Id-1与食管上皮永生化及COX-2表达 | 第91-92页 |
| Ⅶ 5.8 Bcl-2与食管上皮永生化及COX-2表达 | 第92页 |
| Ⅶ 5.9 VEGF与食管上皮永生化及COX-2表达 | 第92-109页 |
| Ⅷ COX-2表达与食管癌细胞的丝裂霉素C抗性有关 | 第109-128页 |
| Ⅷ 1 中英文摘要 | 第109-111页 |
| Ⅷ 1.1 摘要:COX-2表达与食管癌细胞的丝裂霉素C抗性有关 | 第109页 |
| Ⅷ 1.2 ABSTRACT:The alterations of COX-2 expression were associated with the anti-apoptosis effect on EC cells treated by mitomycin C | 第109-111页 |
| Ⅷ 2 引言 | 第111页 |
| Ⅷ 3 材料与方法 | 第111-113页 |
| Ⅷ 3.1 细胞培养 | 第111页 |
| Ⅷ 3.2 MTT法检测细胞数量 | 第111-112页 |
| Ⅷ 3.3 细胞周期分析 | 第112页 |
| Ⅷ 3.4 总RNA的准备 | 第112页 |
| Ⅷ 3.5 cDNA第1链的合成 | 第112页 |
| Ⅷ 3.6 PCR反应 | 第112页 |
| Ⅷ 3.7 蛋白质的抽提与浓度测定 | 第112页 |
| Ⅷ 3.8 Western Blotting分析 | 第112-113页 |
| Ⅷ 3.9 统计学处理 | 第113页 |
| Ⅷ 4 结果 | 第113-115页 |
| Ⅷ 4.1 细胞生长检测 | 第113页 |
| Ⅷ 4.2 细胞周期分析 | 第113-114页 |
| Ⅷ 4.3 MMC处理与COX-2表达 | 第114页 |
| Ⅷ 4.4 MMC处理与Bcl-2蛋白表达 | 第114页 |
| Ⅷ 4.5 MMC处理与P53蛋白表达 | 第114页 |
| Ⅷ 4.6 MMC处理与Rb蛋白表达 | 第114-115页 |
| Ⅷ 4.7 单因素方差分析 | 第115页 |
| Ⅷ 4.8 距离相关分析 | 第115页 |
| Ⅷ 5 讨论 | 第115-128页 |
| Ⅸ 参考文献 | 第128-143页 |
| Ⅹ 致谢 | 第143-145页 |
| Ⅹ Ⅰ 附录 | 第145-149页 |
| Ⅹ Ⅰ.1 博士研究生学习期间发表的论著一览 | 第145-147页 |
| Ⅹ Ⅰ.2 博士研究生学习期间参加学术会议发表的文摘一览 | 第147-148页 |
| Ⅹ Ⅰ.3 博士研究生学习期间作为第一负责人申报的科研课题一览 | 第148页 |
| Ⅹ Ⅰ.4 博士研究生学习期间作为主要负责人申报的科研课题一览 | 第148页 |
| Ⅹ Ⅰ.5 博士研究生学习期间承担理论大课情况一览 | 第148页 |
| Ⅹ Ⅰ.6 博士研究生学习期间完成的译作一览 | 第148页 |
| Ⅹ Ⅰ.7 博士研究生学习期间参与专著编纂情况 | 第148-149页 |
| Ⅹ Ⅰ.8 博士研究生学习期间获得学术荣誉情况 | 第149页 |
| Ⅹ Ⅰ.9 博士研究生学习期间申报科研成果情况 | 第149页 |
| Ⅹ Ⅰ.10 博士研究生学习期间作学术讲演题录 | 第149页 |
| Ⅹ Ⅰ.11 博士研究生学习期间承担社会工作情况 | 第149页 |
