| 第一章 家蚕品种与纯度的分子生物学方法检测研究 | 第1-45页 |
| 第一节 家蚕品种及纯度检测方法的研究进展 | 第9-20页 |
| 1 形态学鉴定 | 第10-11页 |
| 2 物理学鉴定 | 第11页 |
| 3 蛋白质标记技术 | 第11-14页 |
| ·贮藏蛋白质标记 | 第12-13页 |
| ·同工酶标记 | 第13-14页 |
| 4 DNA标记技术 | 第14-20页 |
| ·RFLP技术 | 第14-15页 |
| ·RAPD技术 | 第15-16页 |
| ·AFLP技术 | 第16-17页 |
| ·SCARS技术 | 第17页 |
| ·SSR技术 | 第17-20页 |
| 第二节 家蚕现行品种RAPD特征性研究 | 第20-31页 |
| 1 实验材料 | 第20页 |
| ·供试蚕品种 | 第20页 |
| ·试剂 | 第20页 |
| 2 实验方法 | 第20-22页 |
| ·家蚕卵DNA提取 | 第20-21页 |
| ·集团蚕卵DNA提取方法 | 第20-21页 |
| ·单粒卵微量DNA快速提取方法 | 第21页 |
| ·RAPD检测多态性 | 第21-22页 |
| ·随机引物的筛选 | 第21页 |
| ·特异性随机引物的筛选 | 第21-22页 |
| 3 结果与分析 | 第22-31页 |
| ·家蚕卵DNA提取效果 | 第22-24页 |
| ·集团蚕卵DNA提取效果 | 第22页 |
| ·单粒蚕卵DNA快速提取效果 | 第22-24页 |
| ·RAPD扩增效果 | 第24-31页 |
| ·随机引物的筛选 | 第24-28页 |
| ·特异性随机引物的筛选 | 第28-31页 |
| 第三节 家蚕部分现行蚕品种的SCAR标记研究 | 第31-39页 |
| 1 实验材料 | 第31页 |
| 2 实验方法 | 第31-32页 |
| ·特异性片段的回收 | 第31页 |
| ·将RAPD回收片段连接和重组子转化 | 第31-32页 |
| ·特异性片段的测序及引物设计 | 第32页 |
| ·用SCAR方法进行检测 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-39页 |
| ·部分蚕品种RAPD特征片段的DNA序列 | 第32-36页 |
| ·部分蚕品种SCAR标记检测结果 | 第36-39页 |
| 本章结论与讨论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 第二章 Cinnamomin的大规模纯化及其RNAN-糖苷酶活性的鉴定 | 第45-61页 |
| 第一节 核糖体失活蛋白的研究进展 | 第45-49页 |
| 1 RIP的基本特性 | 第45-46页 |
| 2 RIP的酶学特性及分子作用机制 | 第46-47页 |
| 3 RIP生理功能的探讨 | 第47-48页 |
| 4 RIP的研究意义 | 第48-49页 |
| 第二节 辛纳毒蛋白(Cinnamomin)的提取和纯化 | 第49-54页 |
| 1 实验材料 | 第49页 |
| 2 实验方法 | 第49-51页 |
| ·辛纳毒蛋白粗提液的制备 | 第49页 |
| ·辛纳毒蛋白的亲和层析柱纯化 | 第49-50页 |
| ·AT-Sepharose 4B柱的使用和保存 | 第50页 |
| ·辛纳毒蛋白的亲和层析柱纯化 | 第50页 |
| ·辛纳毒蛋白粉末的制备 | 第50页 |
| ·SDS-PAGE电泳分析 | 第50-51页 |
| 3 结果和分析 | 第51-54页 |
| ·Cinnamomin的粗提效果 | 第51页 |
| ·辛纳毒蛋白的亲和层析柱纯化效果 | 第51-54页 |
| 第三节 大鼠肝核糖体的提取和辛纳毒蛋白活性的鉴定 | 第54-58页 |
| 1 实验材料 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54-56页 |
| ·大鼠肝核糖体的提取 | 第54-55页 |
| ·RNAN-糖苷酶活性的测定 | 第55-56页 |
| ·辛纳毒蛋白与核糖体的反应 | 第55页 |
| ·抽提rRNA | 第55-56页 |
| ·苯胺反应 | 第56页 |
| ·电泳鉴定rRNA | 第56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-58页 |
| ·核糖体制备中的几个注意的问题 | 第56-57页 |
| ·实验用器皿的消毒 | 第56-57页 |
| ·实验用缓冲液等的处理 | 第57页 |
| ·实验全过程低温环境操作 | 第57页 |
| ·几种试剂及有关步骤的作用 | 第57页 |
| ·RNAN-糖苷酶活性的鉴定 | 第57-58页 |
| 本章结论与讨论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 附录1 研究生在读期间发表论文 | 第61-62页 |
| 附录2 致谢 | 第62页 |