| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 缩写表 | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第9-21页 |
| 1． 细胞程序性死亡概述 | 第9页 |
| 2． 细胞程序性死亡的特征及研究方法 | 第9-10页 |
| 2．1 PCD的一般特征 | 第9-10页 |
| 2．2 PCD的研究方法 | 第10页 |
| 3． 植物细胞程序性死亡的分子机制与调控 | 第10-14页 |
| 3．1 植物细胞程序性死亡的信号转导 | 第11-13页 |
| 3．2 植物细胞程序性死亡的基因调控 | 第13-14页 |
| 3．3 植物细胞程序性死亡的相关蛋白 | 第14页 |
| 4． 植物正常发育中的细胞程序性死亡 | 第14-16页 |
| 4．1 植物的营养生长与PCD | 第15页 |
| 4．2 植物的生殖生长与PCD | 第15-16页 |
| 5． 植物与病原物互作中的细胞程序性死亡 | 第16-21页 |
| 5．1 HR属于PCD范畴的证据 | 第17-19页 |
| 5．2 HR中的PCD诱导因子 | 第19-20页 |
| 5．3 过敏反应的可能调控途径及其与细胞PCD的关系 | 第20-21页 |
| 引言 | 第21-22页 |
| 材料与方法 | 第22-25页 |
| 1． 供试品种与叶绣菌菌种 | 第22页 |
| 2． 幼苗培育与接种 | 第22页 |
| 3． 电镜样品制备 | 第22-23页 |
| 4． 小麦叶片、叶锈菌DNA的提取和琼脂糖凝胶电泳分析 | 第23页 |
| 5． 末端脱氧核糖核酸转移酶（TdT）介导的3'-OH末端标记检测 | 第23-25页 |
| 结果与分析 | 第25-43页 |
| 1． 小麦健叶的结构特点 | 第25页 |
| 2． 叶锈菌侵染后对小麦细胞结构的影响 | 第25-40页 |
| 2．1 光镜下小麦叶肉细胞的结构特点 | 第25-30页 |
| 2．2 电镜下小麦叶肉细胞的结构特点 | 第30-40页 |
| 3． 叶锈菌侵染对小麦细胞核内DNA的影响 | 第40-43页 |
| 3．1 DNA梯状图谱 | 第40-41页 |
| 3．2 核DNA断裂程度的显示 | 第41-43页 |
| 讨论 | 第43-53页 |
| 1． 叶锈菌侵染对小麦叶肉细胞结构的影响 | 第43-46页 |
| 1．1 不亲和互作中小麦叶肉细胞结构的变化特点 | 第43-45页 |
| 1．2 亲和互作中小麦叶肉细胞结构的变化特 | 第45-46页 |
| 2． 小麦与叶锈菌互作的HR属植物PCD范畴 | 第46-48页 |
| 2．1 DNA Ladder的形成 | 第46-47页 |
| 2．2 原位末端标记的结果 | 第47-48页 |
| 3． 小麦与叶锈菌不亲和互作的PCD过程中寄主细胞原生质组分降解的主要方式及其趋向 | 第48-49页 |
| 4． 小麦与叶锈菌互作过程中PCD被启动的可能信号分子 | 第49-51页 |
| 4．1 Ca~（2+）可能是小麦与叶锈菌互作中PCD发生的诱导信号 | 第50页 |
| 4．2 活性氧（AO）突发很可能介导HR中PCD的发生 | 第50-51页 |
| 4．3 细胞色素C可能是诱导植物PCD的重要因子 | 第51页 |
| 5． 植物细胞过敏反应、动物细胞凋亡和坏死形态学和生理学方面的比较 | 第51-52页 |
| 6． 小麦与叶锈菌互作是研究植物PCD的良好体系 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-63页 |
| 英文摘要 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
