| 略语表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| Ⅰ.前言 | 第14-16页 |
| Ⅱ.材料与方法 | 第16-32页 |
| 一.材料 | 第16-18页 |
| 1.主要仪器、设备 | 第16-17页 |
| 2.主要试剂 | 第17-18页 |
| 二.方法 | 第18-32页 |
| 1.主要溶液配制 | 第18-19页 |
| 2.主要实验方法 | 第19-32页 |
| (1) 减压缺氧大鼠模型的建立 | 第19页 |
| (2) 组织制备 | 第19页 |
| (3) 血管收缩和舒张反应的生物测定法 | 第19页 |
| (4) 肺腺泡内动脉超微结构观察 | 第19页 |
| (5) 细胞培养 | 第19-20页 |
| (6) 平滑肌细胞鉴定 | 第20-22页 |
| (7) 细胞缺氧模型 | 第22页 |
| (8) ~3H-胸腺嘧啶核苷(~3H-TdR)参入 | 第22页 |
| (9) 细胞趋化反应 | 第22-23页 |
| (10) 美蓝染色分析 | 第23页 |
| (11) 流式细胞计测定细胞中DNA含量 | 第23页 |
| (12) ~(45)Ca~(2+)跨膜内流测定 | 第23-24页 |
| (13) 胃蛋白酶消化法测定细胞胶原合成 | 第24页 |
| (14) PASMC条件培养液(PASMC-CM)的制备 | 第24页 |
| (15) PASMC细胞内cGMP放免测定 | 第24-25页 |
| (16) PASMC培养液中ET-1放免测定 | 第25-26页 |
| (17) cDNA探针的制备 | 第26-27页 |
| (18) cDNA探针的标记 | 第27页 |
| (19) 组织及细胞总RNA的提取 | 第27-28页 |
| (20) Nor thern印迹杂交 | 第28-29页 |
| (21) 斑点杂交 | 第29-30页 |
| (22) RT-PCR | 第30-31页 |
| (23) 统计学处理 | 第31-32页 |
| Ⅲ.实验结果 | 第32-65页 |
| 一.缺氧对PASMC增殖、迁移和胶原合成的影响 | 第32-44页 |
| 1.缺氧对PASMC增殖的影响 | 第32-40页 |
| 2.缺氧促进PASMC的趋化反应 | 第40-43页 |
| 3.缺氧对PASMC胶原合成的影响 | 第43-44页 |
| 二.EDCF／ET-1和EDRF／NO对PASMC作用的多能性 | 第44-65页 |
| 1.ET-1和NO对大鼠离体肺动脉张力的影响及缺氧可特异地破坏EDCF／ET-1和EDRF／NO作用的动态平衡 | 第45-50页 |
| 2.ET-1和NO对PASMC增殖的影响 | 第50-56页 |
| (1) ET-1对PASMC增殖的影响 | 第50-54页 |
| (2) NO对PASMC增殖的影响 | 第54-56页 |
| 3.PDGF、ET-1、NO和ANP对PASMC迁移的影响 | 第56-63页 |
| (1) PDGF诱导PASMC的趋化反应 | 第56-57页 |
| (2) ET-1诱导PASMC的趋化反应 | 第57-60页 |
| (3) NO和ANP对PDGF诱导的PASMC趋化反应的抑制作用 | 第60-63页 |
| 4.ET-1和NO对PASMC胶原合成的影响 | 第63-65页 |
| Ⅳ.讨论 | 第65-75页 |
| 一.缺氧对PASMC的直接作用在HPH发病机制中的作用 | 第65-67页 |
| 二.EDCF／ET-1和EDRF／NO对血管作用的多功能研究 | 第67-69页 |
| 三.肺血管中EDCF／ET-1与EDRF／NO失衡在缺氧性肺血管收缩反应增强和结构重组中的作用 | 第69-74页 |
| 四.结论 | 第74-75页 |
| Ⅴ.参考文献 | 第75-82页 |
| Ⅵ.文献综述 | 第82-110页 |
| 简历 | 第110-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
