| 中文摘要 | 第1-15页 |
| Abstract | 第15-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-70页 |
| ·引言 | 第18-56页 |
| ·生物活性肽的生物学意义及作用机理 | 第18-24页 |
| ·生物活性肽的生理活性概述 | 第19-20页 |
| ·生物活性肽的理化特性 | 第20页 |
| ·生物活性肽形成过程对其理化性质的影响 | 第20-22页 |
| ·肽的体内吸收机制 | 第22-24页 |
| ·生物活性肽的制备方法概述 | 第24-26页 |
| ·直接提取法分离天然生物活性肽 | 第24-25页 |
| ·化学合成法制备目标生物活性肽 | 第25页 |
| ·可控酶解蛋白质制备生物活性肽 | 第25-26页 |
| ·酶解法制备生物活性肽的研究进展 | 第26-30页 |
| ·国外的研究发展状况 | 第27-29页 |
| ·国内蛋白质酶解方法制备生物活性肽的研究进展 | 第29-30页 |
| ·肽类产品的纯化分离技术 | 第30-33页 |
| ·膜分离技术(超滤、钠滤) | 第30-31页 |
| ·离子交换分离技术 | 第31-32页 |
| ·凝胶色谱技术 | 第32页 |
| ·制备液相色谱 | 第32-33页 |
| ·生物活性肽的产业化情况 | 第33-34页 |
| ·蚕蛹蛋白质资源的开发利用研究进展 | 第34-39页 |
| ·蚕蛹蛋白的营养指数 | 第35-36页 |
| ·蚕蛹蛋白的研究和应用现状 | 第36-38页 |
| ·蚕蛹蛋白的开发空白和研究前景 | 第38-39页 |
| ·酶解蛋白质法制备血管紧张素转换酶抑制肽的研究进展 | 第39-48页 |
| ·血管紧张素转换酶概述 | 第39-41页 |
| ·血管紧张素转换酶(ACE)对血压的调节作用 | 第41-42页 |
| ·血管紧张素转换酶(ACE)抑制活性肽的作用机制 | 第42-43页 |
| ·血管紧张素转换酶抑制肽的研究和开发现状 | 第43-48页 |
| ·生物活性肽构效关系理论及分析方法研究情况 | 第48-56页 |
| ·化学结构定量描述符 | 第48-53页 |
| ·统计方法的研究和发展现状 | 第53-55页 |
| ·血管紧张素转换酶抑制肽构效关系的研究进展 | 第55-56页 |
| ·本研究课题的立题背景、研究意义和主要研究内容 | 第56-58页 |
| ·立题背景和研究意义 | 第56-57页 |
| ·主要研究内容 | 第57-58页 |
| ·主要参考文献 | 第58-70页 |
| 第二章 血管紧张素转换酶抑制肽活性的RP-HPLC快速检测方法的建立 | 第70-83页 |
| ·前言 | 第70-71页 |
| ·实验材料和仪器 | 第71-74页 |
| ·实验仪器 | 第71页 |
| ·试剂与原料 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72-74页 |
| ·试剂制备 | 第72页 |
| ·色谱检测条件 | 第72页 |
| ·流动相条件 | 第72页 |
| ·HPLC法快速检测降高血压效果的原理和依据 | 第72-73页 |
| ·分光光度法检测ACE抑制剂的活性 | 第73页 |
| ·酶解蚕蛹蛋白肽的制备 | 第73页 |
| ·统计分析 | 第73-74页 |
| ·结果与讨论 | 第74-79页 |
| ·检测波长的选择 | 第74页 |
| ·底物HHL与产物HA的分离 | 第74-75页 |
| ·本色谱条件的线性分析和最低检测限确定 | 第75页 |
| ·回收率和精密度分析 | 第75-77页 |
| ·HHL和ACE之间的最佳剂量关系 | 第77-78页 |
| ·利用蚕蛹蛋白水解物验证方法的应用性 | 第78-79页 |
| ·结论 | 第79-80页 |
| ·参考文献 | 第80-83页 |
| 第三章 蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶抑制肽的酶解条件优化 | 第83-101页 |
| ·前言 | 第83-84页 |
| ·材料与方法 | 第84-86页 |
| ·实验仪器 | 第84页 |
| ·试剂与原料 | 第84-85页 |
| ·水解物样品的制备 | 第85页 |
| ·HPLC法检测ACE抑制活性 | 第85页 |
| ·水解度的测定 | 第85页 |
| ·统计分析 | 第85-86页 |
| ·结果 | 第86-96页 |
| ·蛋白酶的选择 | 第86-88页 |
| ·水解条件的初步优化 | 第88-90页 |
| ·酶解条件的进一步优化 | 第90-95页 |
| ·具ACE抑制活性的小肽分子量估计 | 第95-96页 |
| ·讨论 | 第96-97页 |
| ·结论 | 第97-98页 |
| ·参考文献 | 第98-101页 |
| 第四章 蚕蛹蛋白组分的营养特性评价及清蛋白组分的酶解动力学研究 | 第101-118页 |
| ·前言 | 第101页 |
| ·材料与方法 | 第101-105页 |
| ·实验仪器 | 第101-102页 |
| ·实验试剂 | 第102页 |
| ·蛋白组分的分级制备方法 | 第102-103页 |
| ·各蛋白组分的氨基酸组成分析 | 第103页 |
| ·蚕蛹蛋白质组分的营养指标评价 | 第103-104页 |
| ·蚕蛹蛋白中清蛋白组分的提取条件优化 | 第104页 |
| ·蚕蛹蛋白清蛋白组分的酶解样制备 | 第104页 |
| ·清蛋白组分的水解度测定 | 第104-105页 |
| ·HPLC法检测ACE抑制活性 | 第105页 |
| ·结果与讨论 | 第105-116页 |
| ·蚕蛹蛋白组分的含量特点 | 第105-106页 |
| ·蚕蛹蛋白质组分的氨基酸组成分析 | 第106-108页 |
| ·蚕蛹蛋白组分的营养价值分析 | 第108-109页 |
| ·蚕蛹清蛋白组分的提取条件优化 | 第109-112页 |
| ·清蛋白酶解制备ACE抑制肽的酶解动力学 | 第112-116页 |
| ·结论 | 第116-117页 |
| ·参考文献 | 第117-118页 |
| 第五章 蚕蛹蛋白组分水解特性与其水解产物的ACE抑制活性之间关系的研究 | 第118-132页 |
| ·引言 | 第118页 |
| ·材料与方法 | 第118-122页 |
| ·实验仪器 | 第118-119页 |
| ·实验试剂 | 第119-120页 |
| ·蛋白组分的分级制备方法 | 第120页 |
| ·蚕蛹蛋白清蛋白组分的酶解样制备 | 第120页 |
| ·蛋白组分的水解度测定 | 第120-121页 |
| ·HPLC法检测ACE抑制活性 | 第121页 |
| ·SDS-PAGE蛋白质凝胶过滤 | 第121页 |
| ·蚕蛹蛋白组分水解产物的凝胶过滤分析 | 第121页 |
| ·统计分析方法 | 第121-122页 |
| ·结果与讨论 | 第122-130页 |
| ·蚕蛹蛋白组分的分子量分布特点 | 第122-124页 |
| ·蚕蛹蛋白不同组分的ACE抑制效果 | 第124-125页 |
| ·不同蛋白组分的水解特性分析 | 第125-130页 |
| ·结论 | 第130-131页 |
| ·参考文献 | 第131-132页 |
| 第六章 血管紧张素转换酶抑制肽的分离纯化及其一级结构鉴定 | 第132-149页 |
| ·引言 | 第132-133页 |
| ·材料与方法 | 第133-137页 |
| ·实验仪器 | 第133页 |
| ·实验试剂 | 第133-134页 |
| ·清蛋白水解产物的制备 | 第134页 |
| ·超滤分离方法 | 第134页 |
| ·凝胶柱层析分离方法 | 第134页 |
| ·纳米级离子阱质谱测定活性肽一级结构的方法 | 第134-135页 |
| ·X!Tandem质谱比对软件和Xcalibur 2.0 SUR2质谱分析软件对离子阱质谱结果的分析方法 | 第135-136页 |
| ·特定结构活性肽的合成方法 | 第136页 |
| ·凝胶层析分离峰的体外抗消化实验方法 | 第136页 |
| ·ACE抑制活性的测定 | 第136-137页 |
| ·结果与讨论 | 第137-146页 |
| ·凝胶柱层析分离结果 | 第137-140页 |
| ·纳米级离子阱质谱测定活性肽一级结构结果 | 第140-143页 |
| ·凝胶柱分离峰的抗消化效果 | 第143-144页 |
| ·特定活性肽的化学合成及活性验证结果 | 第144-146页 |
| ·结论 | 第146-147页 |
| ·参考文献 | 第147-149页 |
| 第七章 基于药效团的血管紧张素转换酶抑制肽的结构优化与构效关系研究 | 第149-164页 |
| ·引言 | 第149-150页 |
| ·材料和方法 | 第150-154页 |
| ·软件平台 | 第150页 |
| ·药效团模型的产生 | 第150-151页 |
| ·分子对接 | 第151-154页 |
| ·结果 | 第154-159页 |
| ·使用应用DS Catalyst生成药效团模型 | 第154-156页 |
| ·基于药效团的ACE抑制肽的结构优化 | 第156-157页 |
| ·肽thr-val-phe与ACE间的相互作用 | 第157-159页 |
| ·讨论 | 第159-161页 |
| ·结论 | 第161-162页 |
| ·参考文献 | 第162-164页 |
| 第八章 蚕蛹清蛋白酶解肽对SHR大鼠降血压效果的研究 | 第164-176页 |
| ·引言 | 第164-165页 |
| ·材料与方法 | 第165-166页 |
| ·实验仪器 | 第165页 |
| ·实验药品及试剂 | 第165页 |
| ·实验动物 | 第165页 |
| ·实验材料制备 | 第165-166页 |
| ·实验方法 | 第166-167页 |
| ·SHR大鼠饲养条件 | 第166页 |
| ·SHR大鼠血压测定 | 第166页 |
| ·实验用蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽的配制 | 第166页 |
| ·蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽一次性给药实验 | 第166-167页 |
| ·蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽长期给药实验 | 第167页 |
| ·蚕蛹清蛋白ACE抑制活性肽急性毒性研究 | 第167-168页 |
| ·半数致死量(LD_(50))的测定 | 第167-168页 |
| ·预试验 | 第167页 |
| ·正式试验 | 第167-168页 |
| ·计算 | 第168页 |
| ·最大给药量的测定 | 第168页 |
| ·统计分析 | 第168-169页 |
| ·结果与讨论 | 第169-174页 |
| ·蚕蛹蛋白酶解肽一次给药对SHR大鼠血压的影响 | 第169-170页 |
| ·蚕蛹清蛋白酶解肽长期给药对SHR大鼠血压的影响 | 第170-172页 |
| ·清蛋白酶解肽长期服用对SHR大鼠体重的影响 | 第172页 |
| ·半数致死量(LD_(50)) | 第172页 |
| ·最大耐受量 | 第172-174页 |
| ·一般情况 | 第172-173页 |
| ·体重变化情况 | 第173页 |
| ·主要脏器解剖肉眼观察 | 第173页 |
| ·最大耐受量 | 第173-174页 |
| ·结论 | 第174-175页 |
| ·参考文献 | 第175-176页 |
| 第九章 蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶抑制肽物料平衡分析 | 第176-178页 |
| ·蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶抑制肽的流程 | 第176-177页 |
| ·物料平衡分析结论 | 第177页 |
| ·建议工艺方案 | 第177-178页 |
| 第十章 结论及展望 | 第178-181页 |
| ·结论 | 第178-180页 |
| ·论文的主要创新点 | 第180页 |
| ·论文的后续研究展望 | 第180-181页 |
| 图示附图 | 第181-183页 |
| 个人简介 | 第183页 |
