| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-39页 |
| ·引言 | 第18-19页 |
| ·偶氮染料简介 | 第19-20页 |
| ·偶氮染料废水生物处理研究进展 | 第20-25页 |
| ·偶氮染料脱色机理 | 第20-21页 |
| ·真菌对偶氮染料的脱色作用 | 第21页 |
| ·藻类对偶氮染料的脱色作用 | 第21-22页 |
| ·细菌对偶氮染料的脱色作用 | 第22页 |
| ·用于偶氮染料脱色的细菌 | 第22-25页 |
| ·偶氮染料生物脱色产物芳香胺类化合物的生物降解研究进展 | 第25-29页 |
| ·磺化芳香胺的来源 | 第25页 |
| ·偶氮染料和芳香胺的毒性 | 第25-26页 |
| ·含磺化芳香胺类化合物废水的特点 | 第26页 |
| ·磺化芳香胺类化合物废水处理研究进展 | 第26-27页 |
| ·物化法 | 第26-27页 |
| ·生物法 | 第27页 |
| ·对氨基苯磺酸废水处理研究进展 | 第27-29页 |
| ·对氨基苯磺酸的来源及危害 | 第27-28页 |
| ·生物法对对氨基苯磺酸的处理研究 | 第28-29页 |
| ·电化学法对对氨基苯磺酸的处理研究 | 第29页 |
| ·本研究主要工作 | 第29-31页 |
| 参考文献 | 第31-39页 |
| 第二章 RB5脱色菌株的分离与生长特性研究 | 第39-54页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·材料与方法 | 第39-41页 |
| ·污泥来源 | 第39-40页 |
| ·染料溶液的配制 | 第40页 |
| ·培养基 | 第40页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第40-41页 |
| ·实验方法 | 第41-44页 |
| ·RB5脱色菌株的分离 | 第41-42页 |
| ·菌株GY-1的16S RDNA分子鉴定 | 第42页 |
| ·菌体浓度-干重标准曲线的绘制 | 第42-43页 |
| ·染料标准曲线的测定 | 第43页 |
| ·菌株生长曲线的绘制 | 第43页 |
| ·不同因素对菌株生长的影响 | 第43-44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-50页 |
| ·RB5脱色菌的分离鉴定 | 第44页 |
| ·菌株GY-1的16S RDNA扩增及序列分析 | 第44-45页 |
| ·菌株的生长曲线 | 第45-46页 |
| ·菌体的浓度—干重标准曲线 | 第46页 |
| ·PH对菌株生长的影响 | 第46-47页 |
| ·温度对菌株生长的影响 | 第47-48页 |
| ·外加氮源对菌株生长的影响 | 第48-49页 |
| ·接种量对菌株生长的影响 | 第49页 |
| ·装液量对菌株生长的影响 | 第49-50页 |
| ·本章小结 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 第三章 肠杆菌GY-1对活性黑5脱色优化及脱色广谱性研究 | 第54-77页 |
| ·引言 | 第54-55页 |
| ·实验材料 | 第55页 |
| ·染料 | 第55页 |
| ·菌株 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-58页 |
| ·单因素影响实验 | 第55-56页 |
| ·氧气对RB5脱色的影响 | 第55-56页 |
| ·PH对RB5脱色的影响 | 第56页 |
| ·温度对RB5脱色的影响 | 第56页 |
| ·接种量对RB5脱色的影响 | 第56页 |
| ·装液量对RB5脱色的影响 | 第56页 |
| ·正交实验 | 第56-57页 |
| ·RB5脱色酶位置的确定 | 第57页 |
| ·菌株GY-1对其他染料的广谱降解性能的研究 | 第57-58页 |
| ·不同碳源对RB5脱色的影响 | 第58页 |
| ·金属离子对RB5脱色的影响 | 第58页 |
| ·盐度对RB5脱色的影响 | 第58页 |
| ·不同氮源对RB5脱色的影响 | 第58页 |
| ·测定方法 | 第58-59页 |
| ·结果与讨论 | 第59-72页 |
| ·单因素影响实验结果 | 第59-64页 |
| ·氧气对RB5脱色的影响 | 第59-60页 |
| ·PH对RB5脱色的影响 | 第60-61页 |
| ·温度对RB5脱色的影响 | 第61-62页 |
| ·接种量对RB5脱色的影响 | 第62-63页 |
| ·装液量对RB5脱色的影响 | 第63-64页 |
| ·正交试验 | 第64-65页 |
| ·脱色酶位置的确定 | 第65页 |
| ·菌株GY-1对其他染料脱色性能研究 | 第65-67页 |
| ·不同碳源对RB5脱色的影响 | 第67-68页 |
| ·金属离子对RB5脱色的影响 | 第68-69页 |
| ·盐度对RB5脱色的影响 | 第69-70页 |
| ·有机氮和无机氮对RB5脱色的影响 | 第70-72页 |
| ·本章小结 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 第四章 肠杆菌GY-1对活性黑5降解动力学研究 | 第77-88页 |
| ·引言 | 第77页 |
| ·材料与方法 | 第77-81页 |
| ·染料 | 第77-79页 |
| ·染料溶液的配制 | 第79页 |
| ·RB5脱色动力学模型 | 第79-81页 |
| ·菌株GY-1降解RB5动力学方程 | 第79-80页 |
| ·RB5降解反应活化能的测定 | 第80-81页 |
| ·MICHAELIS常数的确定 | 第81页 |
| ·测定方法 | 第81页 |
| ·结果与讨论 | 第81-84页 |
| ·不同温度、起始RB5浓度、电子供体和染料的降解动力学研究 | 第81-83页 |
| ·RB5脱色反应中活化能的确定 | 第83-84页 |
| ·米氏常数(KM)和最大脱色速率(VMAX)的确定 | 第84页 |
| ·本章小结 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| 第五章 对氨基苯磺酸(SA)好氧降解性能研究 | 第88-106页 |
| ·引言 | 第88-89页 |
| ·材料与方法 | 第89-93页 |
| ·实验材料与仪器 | 第89-90页 |
| ·化学试剂 | 第89页 |
| ·污泥来源及实验废水组成 | 第89页 |
| ·反应装置及其操作条件 | 第89-90页 |
| ·实验方法 | 第90-93页 |
| ·反应器的启动 | 第90页 |
| ·不同初始浓度条件下的SA降解 | 第90页 |
| ·氧气消耗速率与SA降解率之间的关系 | 第90-91页 |
| ·SA降解系统中氧气消耗速率的在线测定 | 第91-92页 |
| ·分析方法 | 第92-93页 |
| ·实验结果与讨论 | 第93-102页 |
| ·PH对SA降解速率的影响 | 第93页 |
| ·SA生物降解动力学研究 | 第93-94页 |
| ·曝气量对SA降解的影响 | 第94-96页 |
| ·SA降解过程中氧气的消耗速率与初始浓度的关系 | 第96-97页 |
| ·SA降解量和氧气消耗量之间的关系 | 第97-98页 |
| ·活性污泥对SA的矿化作用研究 | 第98-99页 |
| ·活性污泥对SA的降解及矿化 | 第98页 |
| ·SA降解过程中NH_4~+和SO_4~(2-)浓度的变化 | 第98-99页 |
| ·SA降解过程中的紫外扫描分析 | 第99-100页 |
| ·DO在线监测对SA去除过程的指示作用研究 | 第100-102页 |
| ·本章小结 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-106页 |
| 第六章 氨氧化细菌在SA好氧降解过程中的作用研究 | 第106-118页 |
| ·引言 | 第106-107页 |
| ·实验材料与仪器 | 第107-110页 |
| ·化学试剂 | 第107-108页 |
| ·污泥来源和培养基组成 | 第108页 |
| ·SA生物降解反应器 | 第108页 |
| ·实验方法 | 第108-109页 |
| ·活性污泥对SA的降解及NH_4~+的氧化作用 | 第108页 |
| ·不同起始浓度的NH_4~+对SA降解的影响 | 第108-109页 |
| ·丙烯基硫脲对SA降解的影响 | 第109页 |
| ·SA降解菌和AOB对氧气消耗速率的关系 | 第109页 |
| ·分析方法 | 第109-110页 |
| ·实验结果与讨论 | 第110-114页 |
| ·活性污泥对SA及NH_4~+的去除性能 | 第110页 |
| ·不同起始浓度的NH_4~+对SA降解的影响 | 第110-112页 |
| ·ATU作用下活性污泥对SA降解性能研究 | 第112-113页 |
| ·活性污泥中SAB和AOB对氧气亲和性的研究 | 第113-114页 |
| ·本章小结 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-118页 |
| 第七章 微生物燃料电池对SA降解性能的研究 | 第118-132页 |
| ·引言 | 第118-119页 |
| ·实验材料与仪器 | 第119-123页 |
| ·化学试剂 | 第119-120页 |
| ·MFC的构造和操作 | 第120-121页 |
| ·pH变化与阴极电势之间的关系图 | 第121页 |
| ·实验方法 | 第121-122页 |
| ·极化曲线的测定 | 第121-122页 |
| ·MFC生物阴极系统对SA降解的影响 | 第122页 |
| ·不同外阻对SA降解及MFC系统电化学性能的影响 | 第122页 |
| ·不同曝气量对SA降解及MFC系统电化学性能的影响 | 第122页 |
| ·计算与分析方法 | 第122-123页 |
| ·实验结果与讨论 | 第123-129页 |
| ·MFC的启动 | 第123-124页 |
| ·连续流条件下MFC生物阴极系统对SA降解的促进作用 | 第124页 |
| ·序批式条件下不同外阻对SA降解的影响 | 第124-126页 |
| ·序批式条件下不同曝气量对SA降解、pH及电流的影响 | 第126-129页 |
| ·本章小结 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-132页 |
| 第八章 结论与展望 | 第132-135页 |
| ·总结 | 第132-133页 |
| ·本论文的创新点 | 第133页 |
| ·有待进一步研究的内容 | 第133-135页 |
| 附录1. 菌株GY-1经16S RDNA扩增后得到的DNA片段 | 第135-136页 |
| 附录2. 菌株GY-1的16S RDNA测序图 | 第136-138页 |
| 附录3. 专利申请受理通知书 | 第138-139页 |
| 攻读博士学位期间在投及发表学术论文及研究成果情况 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141页 |
