| 中文摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-23页 |
| 符号说明 | 第23-25页 |
| 第一章 前言 | 第25-55页 |
| ·植物抗旱、耐盐的分子机制 | 第26-37页 |
| ·渗透调节物质 | 第28-30页 |
| ·盐胁迫下离子吸收、转运和渗透平衡的调节 | 第30-33页 |
| ·Na~+的外排机制 | 第30-31页 |
| ·Na~+细胞区隔化 | 第31-32页 |
| ·Ca~(2+)调节作用 | 第32页 |
| ·Cl~-离子渗透平衡调节 | 第32-33页 |
| ·保护蛋白和其他参与胁迫应答的蛋白 | 第33-34页 |
| ·胚胎晚期丰富蛋白(LEA) | 第33页 |
| ·热休克蛋白(HSPs) | 第33-34页 |
| ·植物水通道蛋白 | 第34页 |
| ·蛋白酶和蛋白酶抑制剂 | 第34页 |
| ·细胞抗氧化及活性氧清除机制 | 第34-35页 |
| ·信号转导与转录因子调控 | 第35-37页 |
| ·甜菜碱合成的基因工程研究 | 第37-47页 |
| ·甜菜碱的生物合成途径 | 第37-38页 |
| ·甜菜碱生物合成的基因工程研究 | 第38-44页 |
| ·植物CMO/BADH途径的基因工程 | 第39-40页 |
| ·E.coli CDH基因和BADH基因的利用 | 第40-41页 |
| ·转细菌胆碱氧化酶(COD)基因的研究 | 第41-42页 |
| ·以甘氨酸为底物的甜菜碱合成途径的基因工程 | 第42-44页 |
| ·甜菜碱的作用机制研究 | 第44-47页 |
| ·甜菜碱的渗透调节作用 | 第44页 |
| ·甜菜碱的保护机制 | 第44-47页 |
| ·稳定和保护光合作用机构 | 第45-46页 |
| ·抗氧化反应保护 | 第46页 |
| ·稳定生物大分子的结构,保持膜的完整性 | 第46-47页 |
| ·小麦抗旱耐盐性研究与基因工程改良 | 第47-53页 |
| ·小麦抗旱耐盐育种研究的现状 | 第47-48页 |
| ·小麦遗传转化研究进展 | 第48-50页 |
| ·小麦遗传转化技术研究概况 | 第48-49页 |
| ·农杆菌介导的小麦遗传转化 | 第49-50页 |
| ·利用基因工程提高小麦耐盐性研究 | 第50-51页 |
| ·利用基因工程提高小麦耐旱性研究 | 第51-53页 |
| ·干旱胁迫对小麦生长发育的影响 | 第51页 |
| ·小麦适应干旱胁迫的机制 | 第51-53页 |
| ·渗透调节 | 第51-52页 |
| ·光合作用 | 第52页 |
| ·抗氧化酶活性 | 第52-53页 |
| ·LEA蛋白 | 第53页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第53-55页 |
| 第二章 转基因小麦的产生和遗传稳定性分析 | 第55-79页 |
| ·材料与方法 | 第55-65页 |
| ·材料 | 第55-56页 |
| ·转基因受体材料 | 第55页 |
| ·菌株、质粒和基因 | 第55-56页 |
| ·培养基和营养液 | 第56-57页 |
| ·小麦茎尖遗传转化 | 第57-59页 |
| ·小麦转化受体的产生 | 第57页 |
| ·农杆菌活化和小麦无菌苗转化 | 第57页 |
| ·转化植株的筛选与定植 | 第57-58页 |
| ·转基因小麦纯合系的产生与鉴定 | 第58页 |
| ·转基因株系的遗传稳定性分析 | 第58-59页 |
| ·转基因植株的分子生物学检测 | 第59-64页 |
| ·药品及试剂 | 第59页 |
| ·转基因植株的PCR检测 | 第59-61页 |
| ·微量提取小麦叶片DNA | 第59页 |
| ·PCR反应 | 第59-61页 |
| ·Southern杂交检测 | 第61-63页 |
| ·小麦叶片DNA的大量提取 | 第61-62页 |
| ·Southern杂交检测 | 第62-63页 |
| ·半定量RT-PCR检测 | 第63-64页 |
| ·Trizol试剂提取小麦叶片总RNA | 第63-64页 |
| ·反转录及半定量RT-PCR | 第64页 |
| ·小麦叶片甜菜碱含量测定 | 第64-65页 |
| ·结果与分析 | 第65-77页 |
| ·转betA基因小麦植株的获得 | 第65-66页 |
| ·转betA基因植株的分子检测和遗传稳定性分析 | 第66-77页 |
| ·转betA基因株系的筛选和分子检测 | 第66-70页 |
| ·转betA基因小麦叶片的甜菜碱含量 | 第70页 |
| ·转betA基因株系的遗传学分析 | 第70-71页 |
| ·转ApGSMT2和ApDMT2基因小麦的获得和PCR检测 | 第71-76页 |
| ·转ApGSMT2和ApDMT2基因T1代植株的分子检测 | 第76-77页 |
| ·转ApGSMT2和ApDMT2基因小麦甜菜碱含量 | 第77页 |
| ·讨论 | 第77-79页 |
| 第三章 转betA基因小麦的耐盐性分析 | 第79-94页 |
| ·材料与方法 | 第79-82页 |
| ·材料 | 第79页 |
| ·基因表达分析 | 第79页 |
| ·GB含量测定 | 第79页 |
| ·转基因小麦的种子萌发率测定 | 第79-80页 |
| ·转基因小麦苗期耐盐性的测定 | 第80页 |
| ·转基因小麦大田耐盐性试验 | 第80页 |
| ·离子含量测定 | 第80页 |
| ·叶片相对含水量测定 | 第80-81页 |
| ·叶片光合速率测定 | 第81页 |
| ·叶绿素含量测定 | 第81页 |
| ·细胞溶质势测定和渗透调节计算 | 第81页 |
| ·叶片可溶性糖和脯氨酸总量测定 | 第81-82页 |
| ·叶片细胞膜离子渗漏和丙二醛含量测定 | 第82页 |
| ·结果与分析 | 第82-92页 |
| ·盐胁迫后小麦叶片中betA基因表达量和GB含量的变化 | 第82-83页 |
| ·盐胁迫对种子萌发的影响 | 第83-84页 |
| ·盐胁迫前后不同株系小苗的的生长状况 | 第84页 |
| ·盐胁迫前后不同株系植株的生物量变化 | 第84-85页 |
| ·盐胁迫条件下小麦Na~+和K~+离子含量的变化 | 第85-86页 |
| ·盐胁迫对小麦幼苗细胞膜的损伤 | 第86-87页 |
| ·盐胁迫对叶片细胞溶质势和相对含水量的影响 | 第87-88页 |
| ·盐胁迫条件下可溶性糖和脯氨酸含量的变化 | 第88页 |
| ·盐胁迫条件下叶绿素含量的变化 | 第88-89页 |
| ·盐胁迫对光合作用和叶绿素荧光的影响 | 第89-91页 |
| ·转基因小麦在盐碱地中的生长情况 | 第91-92页 |
| ·讨论 | 第92-94页 |
| 第四章 转betA基因小麦的抗旱性分析 | 第94-111页 |
| ·材料与方法 | 第94-97页 |
| ·材料 | 第94页 |
| ·转基因小麦的分子检测 | 第94页 |
| ·转基因植株的PCR检测 | 第94页 |
| ·基因表达分析 | 第94页 |
| ·小麦种子萌发处理 | 第94-95页 |
| ·小苗根系发育的观察 | 第95页 |
| ·小麦苗期干旱胁迫处理 | 第95页 |
| ·甜菜碱含量和生理指标的测定 | 第95-96页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化物酶(POD)活性测定 | 第96-97页 |
| ·结果与分析 | 第97-108页 |
| ·转基因小麦植株的PCR检测 | 第97页 |
| ·渗透胁迫对转基因小麦种子萌发率和生长势的影响 | 第97-99页 |
| ·干旱处理对小麦根系生长的影响 | 第99-100页 |
| ·干旱胁迫对转基因小麦生长状态的影响 | 第100-101页 |
| ·干旱致死对分蘖期小麦植株的影响 | 第101-102页 |
| ·干旱处理对甜菜碱含量和betA基因表达的影响 | 第102-103页 |
| ·干旱胁迫对叶片渗透势、可溶性糖含量和脯氨酸含量的影响 | 第103-104页 |
| ·干旱胁迫对小麦细胞膜离子渗漏和丙二醛含量的影响 | 第104-105页 |
| ·干旱胁迫对转基因植株叶绿素含量的影响 | 第105-106页 |
| ·干旱胁迫对小麦叶片光合作用的影响 | 第106-108页 |
| ·干旱胁迫对叶片超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化物酶(POD)活性的影响 | 第108页 |
| ·讨论 | 第108-111页 |
| 第五章 讨论与展望 | 第111-117页 |
| ·小麦遗传转化技术的改进对于小麦抗逆育种有重要意义 | 第111-112页 |
| ·提高小麦的甜菜碱含量能有效改进小麦的抗旱耐盐性 | 第112-114页 |
| ·转ApGSMT2和ApDMT2小麦的应用前景 | 第114-115页 |
| ·总结与展望 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-144页 |
| 致谢 | 第144-145页 |
| 研究生在读期间论文的发表情况 | 第145-146页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第146-147页 |
| 附录 | 第147-225页 |
