| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第1章 绪论 | 第8-18页 |
| 1.1 胰岛β细胞与2型糖尿病 | 第8-9页 |
| 1.2 长期高血糖对胰岛β细胞功能的影响 | 第9页 |
| 1.3 胰岛β细胞胰岛素信号传导通路 | 第9-14页 |
| 1.3.1 InsR-IRS-PI3K途径 | 第9-11页 |
| 1.3.2 PI3K下游信号的调节 | 第11-13页 |
| 1.3.3 PDX-1-GLUT2/GCK信号通路 | 第13页 |
| 1.3.4 GSK-3β与caspase-3 | 第13-14页 |
| 1.4 保护胰岛β细胞的治疗方法 | 第14-15页 |
| 1.5 壳聚(寡)糖及其衍生物的活性及应用 | 第15-16页 |
| 1.5.1 壳聚糖及其衍生物的活性及应用 | 第15页 |
| 1.5.2 壳寡糖及其衍生物的活性及应用 | 第15-16页 |
| 1.6 论文研究目的和意义 | 第16-18页 |
| 第2章 不同取代度壳寡(聚)糖胍盐酸盐的微波合成 | 第18-30页 |
| 2.1 引言 | 第18页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第18-19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.3.1 壳寡(聚)糖双胍的合成路线 | 第19页 |
| 2.3.2 壳寡糖双胍的合成 | 第19-20页 |
| 2.3.3 壳聚糖双胍的合成 | 第20-21页 |
| 2.3.4 壳寡(聚)糖双胍的表征 | 第21-24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-28页 |
| 2.4.1 红外光谱 | 第24-26页 |
| 2.4.2 核磁分析 | 第26-28页 |
| 2.5 本章小结 | 第28-30页 |
| 第3章 壳寡(聚)糖胍对胰岛素抵抗HepG2细胞的影响 | 第30-42页 |
| 3.1 引言 | 第30页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.3 细胞实验 | 第31-32页 |
| 3.3.1 MTT法测细胞活力 | 第31页 |
| 3.3.2 葡萄糖氧化酶法检测细胞葡萄糖消耗量 | 第31-32页 |
| 3.3.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第32页 |
| 3.4 壳寡(聚)糖双胍对胰岛素抵抗HepG2细胞干预实验 | 第32-34页 |
| 3.4.1 壳寡(聚)糖双胍对IRHepG2细胞活力的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.2 壳寡(聚)糖双胍对IRHepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第34页 |
| 3.5 统计分析 | 第34-35页 |
| 3.6 结果与讨论 | 第35-41页 |
| 3.6.1 壳寡(聚)糖胍的细胞毒性实验 | 第35-37页 |
| 3.6.2 胰岛素抵抗模型的建立与鉴定 | 第37页 |
| 3.6.3 壳寡(聚)糖双胍对IRHepG2细胞干预实验效果研究 | 第37-41页 |
| 3.7 小结 | 第41-42页 |
| 第4章 壳寡糖双胍对胰岛β细胞的修复作用研究 | 第42-62页 |
| 4.1 引言 | 第42页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第42-43页 |
| 4.3 动物实验 | 第43-46页 |
| 4.3.1 动物 | 第43页 |
| 4.3.2 二型糖尿病大鼠模型的建立 | 第43-44页 |
| 4.3.3 动物实验分组 | 第44页 |
| 4.3.4 标本采集 | 第44-45页 |
| 4.3.5 动物实验各项指标的测定 | 第45-46页 |
| 4.4 统计分析 | 第46-47页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第47-59页 |
| 4.5.1 COSG对大鼠空腹血糖(FBG)、尿糖的影响 | 第47-49页 |
| 4.5.2 COSG对大鼠空腹血清胰岛素浓度的影响 | 第49-50页 |
| 4.5.3 胰腺细胞病理学分析 | 第50-51页 |
| 4.5.4 COSG对大鼠胰腺组织Akt磷酸化的影响 | 第51-53页 |
| 4.5.5 COSG对大鼠胰腺组织FoxO1蛋白表达情况的影响 | 第53-54页 |
| 4.5.6 COSG对大鼠胰腺组织PDX-1、GLUT2、GCK表达量的影响 | 第54-56页 |
| 4.5.7 COSG对大鼠胰腺组织GSK-3β磷酸化、Caspase-3表达的影响 | 第56-59页 |
| 4.6 小结 | 第59-62页 |
| 全文结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 附录A：中英文缩略语索引 | 第71-72页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
