摘要 | 第3-4页 |
abstract | 第4-5页 |
第1章 绪论 | 第9-21页 |
1.1 细胞表面糖基化修饰的生物学意义 | 第9-11页 |
1.1.1 细胞表面的聚糖的结构 | 第9-10页 |
1.1.2 细胞表面糖基化修饰的生物功能 | 第10-11页 |
1.2 细胞表面聚糖的不同识别方式与研究进展 | 第11-19页 |
1.2.1 硼酸的共价识别 | 第11页 |
1.2.2 特定聚糖与凝集素的特异性识别 | 第11-13页 |
1.2.3 细胞表面特定单糖的代谢标记技术与生物正交反应修饰 | 第13-19页 |
1.3 本论文研究工作的提出与内容 | 第19-21页 |
1.3.1 基于AgNPs等离子体增强FRET细胞表面特定蛋白唾液酸的成像分析研究 | 第19-20页 |
1.3.2 基于激基缔合特性的细胞表面单唾液酸和邻双唾液酸结构聚糖荧光成像分析研究 | 第20-21页 |
第2章 AgNPs等离子体增强FRET细胞表面特定蛋白唾液酸的成像分析研究.. | 第21-38页 |
2.1 引言 | 第21-23页 |
2.2 实验部分 | 第23-25页 |
2.2.1 药品与试剂 | 第23页 |
2.2.2 实验仪器与设备 | 第23-24页 |
2.2.3 AgNPs探针的制备和表征 | 第24页 |
2.2.4 基于AgNPs等离子体增强FRET细胞表面特定蛋白唾液酸的成像 | 第24-25页 |
2.2.5 基于AgNPs增强FRET成像CCRF-CEM细胞表面特定蛋白唾液酸的药物处理 | 第25页 |
2.3 结果与讨论 | 第25-37页 |
2.3.1 AgNPs与Apt-Cy3-AgNPs探针的表征 | 第25-29页 |
2.3.2 细胞表面目标蛋白PTK7的成像以及细胞与Apt-Cy3-AgNPs探针孵育时间的优化 | 第29-30页 |
2.3.3 细胞表面SiaNAz代谢标记时间的优化以及AgNPs对SiaNAz成像结果的影响 | 第30-32页 |
2.3.4 CCRF-CEM细胞表面目标蛋白PTK7的唾液酸的成像分析 | 第32-33页 |
2.3.5 基于AgNPs增强FRET方法的CCRF-CEM细胞的光谱分析 | 第33-34页 |
2.3.6 CCRF-CEM细胞表面目标蛋白PTK7的唾液酸成像中AgNPs增强FRET荧光的效果分析 | 第34-36页 |
2.3.7 基于AgNPs增强FRET成像方法通过药物处理评价CCRF-CEM细胞表面目标蛋白PTK7的唾液酸 | 第36-37页 |
2.4 本章小结 | 第37-38页 |
第3章 基于激基缔合特性的细胞表面单唾液酸和邻双唾液酸结构聚糖荧光成像分析研究 | 第38-48页 |
3.1 引言 | 第38-39页 |
3.2 实验部分 | 第39-43页 |
3.2.1 药品与试剂 | 第39页 |
3.2.2 实验仪器与设备 | 第39-40页 |
3.2.3 芘和苝分子的荧光性质 | 第40-41页 |
3.2.4 芘和苝分子的细胞毒性评价 | 第41-42页 |
3.2.5 细胞表面特定唾液酸结构的光谱和成像检测 | 第42-43页 |
3.3 结果与讨论 | 第43-47页 |
3.3.1 基于激基缔合细胞表面单唾液酸和邻双唾液酸检测分析的芘分子浓度条件优化 | 第43-44页 |
3.3.2 细胞表面代谢标记SiaNAz的芘分子共价修饰 | 第44页 |
3.3.3 基于芘分子激基缔合的细胞表面单唾液酸和邻双唾液酸的荧光光谱分析 | 第44-45页 |
3.3.4 基于苝分子激基缔合的细胞表面单唾液酸和邻双唾液酸荧光成像分析 | 第45-47页 |
3.4 本章小结 | 第47-48页 |
第4章 结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
致谢 | 第54-56页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第56页 |