| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 文献回顾 | 第14-34页 |
| 第一部分 小鼠溃疡性结肠炎模型中肠粘膜固有层CD226~+F4/80~+巨噬细胞增多 | 第34-48页 |
| 1 材料 | 第34-36页 |
| 1.1 实验动物 | 第34页 |
| 1.2 主要试剂 | 第34-35页 |
| 1.3 主要试剂配方 | 第35-36页 |
| 1.4 主要仪器 | 第36页 |
| 2 方法 | 第36-41页 |
| 2.1 DSS诱导的小鼠急性溃疡性结肠炎模型的构建 | 第36-38页 |
| 2.2 H&E染色 | 第38-39页 |
| 2.3 小鼠肠粘膜固有层单个核细胞的分离 | 第39页 |
| 2.4 流式细胞术 | 第39-40页 |
| 2.5 统计学分析 | 第40-41页 |
| 3 结果 | 第41-46页 |
| 3.1 成功建立3%DSS诱导的小鼠溃疡性结肠炎模型 | 第41-43页 |
| 3.2 小鼠溃疡性结肠炎模型中肠粘膜固有层CD226~+F4/80~+巨噬细胞增多 | 第43-46页 |
| 4 讨论 | 第46-48页 |
| 第二部分 CD226基因敲除小鼠溃疡性结肠炎症状减轻 | 第48-60页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| 1.1 实验动物 | 第48页 |
| 1.2 主要试剂 | 第48-49页 |
| 1.3 主要试剂配方 | 第49页 |
| 1.4 主要仪器 | 第49页 |
| 2 方法 | 第49-53页 |
| 2.1 小鼠基因型鉴定 | 第49-51页 |
| 2.2 DSS诱导的小鼠急性溃疡性结肠炎模型的构建 | 第51-52页 |
| 2.3 H&E染色 | 第52页 |
| 2.4 统计学分析 | 第52-53页 |
| 3 结果 | 第53-58页 |
| 3.1 CD226基因敲除小鼠基因型鉴定 | 第53页 |
| 3.2 CD226基因敲除小鼠溃疡性结肠炎症状减轻 | 第53-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 第三部分 CD226分子通过影响巨噬细胞极化参与小鼠溃疡性结肠炎发病 | 第60-75页 |
| 1 材料 | 第60-61页 |
| 1.1 主要试剂 | 第60-61页 |
| 1.2 主要试剂配方 | 第61页 |
| 1.3 主要仪器 | 第61页 |
| 2 方法 | 第61-67页 |
| 2.1 小鼠腹腔巨噬细胞的提取 | 第61页 |
| 2.2 小鼠骨髓来源巨噬细胞（BMDM）的诱导 | 第61-62页 |
| 2.3 实时定量聚合酶链式反应（Quantitative Real-time Polymerase Chain Reaction,qRT-PCR） | 第62-65页 |
| 2.4 流式细胞术 | 第65-66页 |
| 2.5 统计学分析 | 第66-67页 |
| 3 结果 | 第67-73页 |
| 3.1 成功获得高纯度的小鼠腹腔巨噬细胞和小鼠骨髓来源巨噬细胞 | 第67页 |
| 3.2 小鼠腹腔巨噬细胞和骨髓来源巨噬细胞表面表达CD226分子 | 第67-68页 |
| 3.3 CD226分子对小鼠骨髓来源巨噬细胞M1/M2极化的影响 | 第68-71页 |
| 3.4 CD226分子对小鼠腹腔巨噬细胞M1/M2极化的影响 | 第71-73页 |
| 4 讨论 | 第73-75页 |
| 小结 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-102页 |
| 个人简历和研究成果 | 第102-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
