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Bursin模拟肽的鉴定及表达模拟肽的SWPV转移载体构建

摘要第8-10页
Abstract第10-11页
英文缩写词表第12-13页
第一章 文献综述第13-23页
    1.1 三肽囊素研究进展第13-17页
        1.1.1 法氏囊研究简况第13-14页
        1.1.2 法氏囊组织提取物的生物学活性研究第14-15页
        1.1.3 三肽囊素的研究进展第15-17页
    1.2 噬菌体展示技术第17-19页
        1.2.1 噬菌体展示技术的原理及展示系统的分类第17-18页
        1.2.2 噬菌体展示技术在筛选模拟抗原表位中的应用第18-19页
    1.3 猪痘病毒及其作为表达载体的研究进展第19-23页
        1.3.1 猪痘病毒的简介第19-20页
        1.3.2 猪痘病毒的分子生物学特性第20页
        1.3.3 猪痘病毒作为表达载体的研究进展第20-23页
第二章 含Bursin模拟表位的噬菌体筛选及其模拟肽的鉴定第23-37页
    2.1 实验材料与试剂第23-24页
        2.1.1 主要仪器设备第23页
        2.1.2 主要试剂第23页
        2.1.3 试剂的配制第23-24页
    2.2 方法第24-29页
        2.2.1 淘选模拟三肽囊素抗原表位的噬菌体第24-25页
        2.2.2 噬菌体的滴度测定第25-26页
        2.2.3 噬菌体的扩增与纯化第26页
        2.2.4 噬菌体克隆DNA模板的快速纯化及序列测定第26-27页
        2.2.5 阳性噬菌体克隆的鉴定第27页
        2.2.6 合成肽第27-28页
        2.2.7 合成肽竞争ELISA的鉴定第28-29页
    2.3 结果第29-35页
        2.3.1 亲和淘选结果第29-30页
        2.3.2 噬菌体扩增与纯化结果第30-31页
        2.3.3 噬菌体DNA提取及测序结果第31-33页
        2.3.4 阳性噬菌体克隆鉴定结果第33页
        2.3.5 合成肽的结果第33-34页
        2.3.6 合成肽竞争ELISA鉴定结果第34-35页
    2.4 讨论与小结第35-37页
        2.4.1 亲和淘选模拟三肽囊素表位的噬菌体第35页
        2.4.2 间接竞争ELISA法筛选三肽囊素的模拟肽第35-36页
        2.4.3 小结第36-37页
第三章 M42模拟肽的核心序列及其与脾淋巴细胞结合的分析第37-43页
    3.1 实验材料与试剂第37页
        3.1.1 主要仪器设备第37页
        3.1.2 主要试剂第37页
        3.1.3 实验材料第37页
    3.2 方法第37-39页
        3.2.1 合成不同肽用作核心序列的分析第37-38页
        3.2.2 竞争ELISA法分析M42肽核心序列第38页
        3.2.3 淋巴细胞悬液的制备第38-39页
        3.2.4 荧光标记肽与淋巴细胞作用及结果观察第39页
    3.3 结果第39-41页
        3.3.1 竞争ELISA法分析M42肽核心序列结果第39-40页
        3.3.2 荧光标记肽与淋巴细胞作用结果第40-41页
    3.4 讨论与小结第41-43页
        3.4.1 M42肽核心序列分析第41-42页
        3.4.2 M42肽与脾淋巴细胞结合特性分析第42页
        3.4.3 小结第42-43页
第四章 Bursin模拟肽对杂交瘤细胞抗体分泌的影响第43-51页
    4.1 实验材料与试剂第43-44页
        4.1.1 主要仪器设备第43页
        4.1.2 主要试剂第43页
        4.1.3 杂交瘤细胞株第43页
        4.1.4 试剂的配制第43-44页
    4.2 方法第44-46页
        4.2.1 小鼠腹水中单克隆抗体的纯化第44页
        4.2.2 标准曲线的制作第44-45页
        4.2.3 杂交瘤细胞复苏及培养第45页
        4.2.4 杂交瘤细胞培养浓度摸索第45页
        4.2.5 Bursin及模拟肽对杂交瘤细胞抗体分泌的影响第45页
        4.2.6 间接ELISA检测杂交瘤抗体分泌情况第45-46页
    4.3 结果第46-49页
        4.3.1 纯化单克隆抗体结果第46-47页
        4.3.2 标准曲线的制作及细胞培养浓度摸索结果第47页
        4.3.3 Bursin及模拟肽对杂交瘤细胞抗体分泌影响结果第47-49页
    4.4 讨论与小结第49-51页
        4.4.1 单克隆抗体的纯化第49页
        4.4.2 Bursin及模拟肽对杂交瘤抗体分泌的影响第49-50页
        4.4.3 小结第50-51页
第五章 Bursin模拟肽在小鼠体内的免疫增强作用第51-58页
    5.1 实验材料与试剂第51页
        5.1.1 主要仪器设备第51页
        5.1.2 主要试剂第51页
        5.1.3 细胞和病毒第51页
        5.1.4 实验动物及材料第51页
    5.2 方法第51-53页
        5.2.1 重组猪痘病毒的增殖及滴度测定第51-52页
        5.2.2 重组猪痘病毒的灭活及灭活效果检查第52页
        5.2.3 实验小鼠的免疫第52-53页
        5.2.4 免疫小鼠血清采集及PCV2抗体的检测第53页
    5.3 结果第53-56页
        5.3.1 重组猪痘病毒增殖及滴度测定结果第53-54页
        5.3.2 病毒灭活检查第54-55页
        5.3.3 免疫小鼠抗体水平检测结果第55-56页
    5.4 讨论与小结第56-58页
        5.4.1 讨论第56页
        5.4.2 小结第56-58页
第六章 表达M42模拟肽的重组猪痘病毒转移载体构建第58-65页
    6.1 实验材料与试剂第58-59页
        6.1.1 主要仪器设备第58页
        6.1.2 主要试剂第58页
        6.1.3 质粒和菌株第58页
        6.1.4 试剂的配制第58-59页
        6.1.5 P28启动子序列第59页
    6.2 方法第59-61页
        6.2.1 M42肽DNA模板的合成第59页
        6.2.2 PCR扩增P28-M42片段第59-60页
        6.2.3 pSW-E11-28C质粒提取第60-61页
        6.2.4 转移载体的构建第61页
    6.3 结果第61-63页
        6.3.1 扩增P28-M42片段及提取pSW-E11-28C质粒结果第61-62页
        6.3.2 构建质粒转化JM109的菌落PCR鉴定第62-63页
        6.3.3 pSW-E11-28C-28M42双酶切鉴定第63页
    6.4 讨论与小结第63-65页
        6.4.1 讨论第63-64页
        6.4.2 小结第64-65页
全文总结第65-66页
参考文献第66-71页
致谢第71页

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