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拟南芥沉默因子MOM1与SUMO连接酶类似蛋白PIAL1、PIAL2形成复合体调控转录沉默

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-6页
第一章 前言第11-30页
    1.1 研究背景第11-26页
        1.1.1 DNA甲基化与组蛋白修饰第11-21页
        1.1.2 小泛素类似修饰因子SUMO第21-26页
    1.2 研究对象第26-28页
        1.2.1 转录基因沉默调控因子——MOM1第26-27页
        1.2.2 SUMO连接酶第27-28页
    1.3 研究的问题第28-29页
    1.4 研究的意义第29-30页
第二章 实验材料第30-35页
    2.1 植物材料第30-31页
    2.2 菌株第31页
    2.3 载体第31-32页
    2.4 试剂第32-33页
    2.5 仪器与耗材第33-35页
第三章 实验方法第35-60页
    3.1 植物培养第35-36页
        3.1.1 种子的消毒第35页
        3.1.2 播种第35-36页
        3.1.3 植物的培养第36页
    3.2 突变体的获得第36-41页
        3.2.1 遗传筛选体系的建立第36-38页
        3.2.2 突变体的遗传筛选第38-39页
        3.2.3 突变体的基因定位第39-41页
        3.2.4 转移DNA(T-DNA)插入突变体的鉴定第41页
    3.3 突变体表型的鉴定第41-45页
        3.3.1 沉默位点转录水平的检测第42-44页
        3.3.2 RNA深度测序分析第44-45页
        3.3.3 全基因组甲基化分析第45页
    3.4 突变体表型的互补验证第45-52页
        3.4.1 载体构建第45-50页
        3.4.2 农杆菌感受态的转化第50页
        3.4.3 农杆菌介导的花序侵染法转化拟南芥第50-51页
        3.4.4 转基因阳性苗的鉴定第51-52页
    3.5 酵母双杂交体系检测蛋白相互作用第52-54页
    3.6 蛋白的体外结合第54-55页
    3.7 植物体内蛋白互作的检测第55-58页
        3.7.1 植物体内蛋白复合体的亲和纯化第55-56页
        3.7.2 蛋白银染与质谱分析第56-57页
        3.7.3 蛋白免疫共沉淀第57页
        3.7.4 凝胶层析法第57-58页
    3.8 蛋白的体外SUMO化活性检测第58-60页
第四章 实验结果与分析第60-96页
    4.1 新转录沉默调节因子PIAL1、PIAL2功能研究第60-76页
        4.1.1 遗传筛选新转录沉默调节因子第60-64页
        4.1.2 4-3突变体的基因定位与互补验证第64-67页
        4.1.3 PIAL1、PIAL2调控基因转录沉默功能部分冗余第67-70页
        4.1.4 PIAL1、PIAL2与MOM1调控共同位点转录沉默第70-72页
        4.1.5 PIAL1和PIAL2调控转录沉默但不改变DNA甲基化第72-76页
    4.2 MOM1、PIAL1、PIAL2形成复合体调控基因转录沉默第76-90页
        4.2.1 PIAL1、PIAL2、MOM1在植物体内形成高分子量复合体第76-78页
        4.2.2 PIAL1/2的IND结构域是形成同源聚合物以及与MOM1结合所必要的第78-81页
        4.2.3 PIAL2通过IND与MOM1在植物体内形成复合体调控基因转录沉默第81-86页
        4.2.4 MOM1二聚体是其调控基因转录沉默所必要的第86-90页
    4.3 PIAL2-MOM1复合体调控基因转录沉默不依赖SUMO第90-96页
        4.3.1 PIAL2的SUMO连接酶活性不参与调控基因转录沉默第90-93页
        4.3.2 MOM1不是作为SUMO化的底物来调控基因转录沉默的第93-96页
第五章 讨论第96-100页
    5.1 MOM1、PIAL1、PIAL2与RdDM的关系第96页
    5.2 MOM1与PIAL1、PIAL2形成紧密复合体调控基因转录第96-98页
    5.3 MOM1 -PIAL1/2与SUMO的关系第98-100页
参考文献第100-107页
致谢第107-109页
发表的学术论文第109-110页

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