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较大容量冻干血小板的实验研究

摘要第3-6页
Abstract第6-10页
引言第14-16页
第一章 冻干血小板保护液优化的实验研究第16-28页
    1.1 材料与方法第16-19页
        1.1.1 主要试剂第16页
        1.1.2 主要仪器第16-17页
        1.1.3 血小板来源第17页
        1.1.4 主要溶液的配制第17页
        1.1.5 实验分组第17页
        1.1.6 验证实验分组第17-18页
        1.1.7 冻干血小板前预处理第18页
        1.1.8 血小板悬液冻干第18页
        1.1.9 血小板最大聚集率第18页
        1.1.10 用流式细胞仪检测血小板PAC-1和CD62P阳性表达率第18页
        1.1.11 血小板冻干复水化后检测第18页
        1.1.12 血小板透射电镜下形态结构第18-19页
        1.1.13 统计学处理第19页
    1.2 实验结果第19-25页
        1.2.1 优化血小板保护液筛选结果第19-22页
        1.2.2 验证实验结果第22-25页
    1.3 讨论第25-28页
第二章 较大容量血小板冻干工艺的实验研究第28-39页
    2.1 材料与方法第28-31页
        2.1.1 主要试剂第28页
        2.1.2 主要仪器第28-29页
        2.1.3 血小板来源第29页
        2.1.4 主要溶液的配制第29页
        2.1.5 实验方法第29-31页
    2.2 实验结果第31-37页
        2.2.1 血小板冻干专用袋的研制第31-33页
        2.2.2 血小板冻干专用袋密封性检测第33页
        2.2.3 血小板冻干专用袋无菌性检测第33页
        2.2.4 较大容量血小板冻干真空度和时间第33-34页
        2.2.5 较大容量冻干血小板复水化后血小板回收率和平均血小板体积第34页
        2.2.6 较大容量血小板冻干复水化后血小板最大聚集率第34-35页
        2.2.7 较大容量血小板冻干复水化后血小板活化标志PAC-1阳性表达率第35页
        2.2.8 较大容量冻干血小板复水化后血小板活化标志CD62P阳性表达率第35-36页
        2.2.9 较大容量冻干血小板电镜下形态结构第36-37页
        2.2.10 较大容量冻干血小板含水量的检测第37页
    2.3 讨论第37-39页
第三章 较大容量冻干血小板促人脐静脉内皮细胞的增殖作用第39-45页
    3.1 材料与方法第39-40页
        3.1.1 实验试剂第39页
        3.1.2 实验仪器第39页
        3.1.3 细胞株第39页
        3.1.4 实验方法第39-40页
        3.1.5 统计学分析第40页
    3.2 实验结果第40-43页
        3.2.1 CCK8法检测不同浓度血小板培养24h人脐静脉内皮细胞的增殖活性(OD值)第40-41页
        3.2.2 不同浓度血小板对培养48h人脐静脉内皮细胞增殖的影响第41-42页
        3.2.3 不同浓度血小板对培养72h人脐静脉内皮细胞增殖的影响第42-43页
    3.3 讨论第43-45页
第四章 较大容量冻干血小板的安全性评价第45-53页
    4.1 材料与方法第45-46页
        4.1.1 实验动物第45页
        4.1.2 皮肤急性刺激实验第45-46页
        4.1.3 重复给药毒性实验第46页
        4.1.4 观察指标第46页
        4.1.5 统计学分析第46页
    4.2 实验结果第46-51页
        4.2.1 皮肤刺激实验第46-47页
        4.2.2 重复给药毒性实验第47-50页
        4.2.3 FDP对大鼠尿素氮的影响第50-51页
    4.3 讨论第51-53页
结语第53-55页
参考文献第55-58页
附录第58-59页
在校期间发表论文情况第59-60页
致谢第60-61页
附件第61页

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