| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-27页 |
| 1.1 神经病理性疼痛的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1.1 神经病理性疼痛的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.1.2 神经病理性疼痛模型的建立 | 第14-15页 |
| 1.1.3 神经病理性疼痛的发生机制 | 第15-17页 |
| 1.2 神经病理性疼痛的治疗 | 第17-19页 |
| 1.3 电针镇痛的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 电针治疗神经病理性疼痛的机制 | 第20-22页 |
| 1.5 突触结合蛋白-Ⅰ的研究进展 | 第22-24页 |
| 1.6 研究思路 | 第24-25页 |
| 1.7 研究内容 | 第25页 |
| 1.7.1 突触结合蛋白-Ⅰ对神经病理性疼痛大鼠的作用 | 第25页 |
| 1.7.2 电针对神经病理性疼痛大鼠机械痛阈的影响 | 第25页 |
| 1.7.3 脊髓SytⅠ在电针缓解神经病理性疼痛大鼠中的作用 | 第25页 |
| 1.8 研究目的及意义 | 第25-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-43页 |
| 2.1 主要仪器与设备 | 第27-28页 |
| 2.2 主要药品试剂 | 第28-29页 |
| 2.3 主要溶液及试剂的配制 | 第29-30页 |
| 2.4 试验动物的准备及试验设计 | 第30-31页 |
| 2.4.1 试验动物的准备 | 第30页 |
| 2.4.2 试验设计 | 第30-31页 |
| 2.5 动物模型制备 | 第31-32页 |
| 2.6 鞘内置管及注射 | 第32-33页 |
| 2.7 电针方法 | 第33页 |
| 2.8 大鼠足底机械痛阈的测定 | 第33-34页 |
| 2.9 SytⅠ基因表达水平测定 | 第34-37页 |
| 2.9.1 总RNA提取与浓度测定 | 第34-35页 |
| 2.9.2 引物设计与合成 | 第35页 |
| 2.9.3 cDNA样品制备 | 第35-36页 |
| 2.9.4 引物验证 | 第36-37页 |
| 2.9.5 荧光定量PCR | 第37页 |
| 2.10 SytⅠ蛋白水平测定 | 第37-42页 |
| 2.10.1 蛋白印迹 | 第37-39页 |
| 2.10.2 免疫组织化学 | 第39-42页 |
| 2.11 统计学分析 | 第42-43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-48页 |
| 3.1 鞘内注射SytⅠ抗体对神经病理痛大鼠机械痛阈的影响 | 第43-44页 |
| 3.2 电针对神经病理性疼痛大鼠机械痛阈的影响 | 第44-45页 |
| 3.3 荧光定量PCR | 第45-46页 |
| 3.3.1 引物验证 | 第45页 |
| 3.3.2 电针对大鼠脊髓SytⅠ基因表达水平的影响 | 第45-46页 |
| 3.4 电针对大鼠脊髓SytⅠ蛋白表达水平的影响 | 第46-47页 |
| 3.5 免疫组织化学 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-54页 |
| 4.1 疼痛模型的选择与建立 | 第48-49页 |
| 4.2 突触结合蛋白-Ⅰ对SNI模型大鼠痛阈的影响 | 第49-50页 |
| 4.3 电针穴位的选择 | 第50页 |
| 4.4 电针参数的选择 | 第50-52页 |
| 4.5 电针对大鼠脊髓突触结合蛋白-Ⅰ表达水平的影响 | 第52-54页 |
| 5 结论 | 第54页 |
| 6 研究创新点 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-65页 |
| 附录 补充材料 | 第65-67页 |
| 附录 发表论文 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
