| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 1 前言 | 第7-9页 |
| 2 材料与方法 | 第9-20页 |
| 2.1 主要试剂和材料 | 第9页 |
| 2.2 主要试剂的配置 | 第9-10页 |
| 2.3 主要仪器 | 第10-11页 |
| 2.4 细胞培养与处理 | 第11-12页 |
| 2.4.1 细胞复苏 | 第11页 |
| 2.4.2 细胞培养的培养及传代 | 第11页 |
| 2.4.3 细胞冻存 | 第11-12页 |
| 2.5 CCK8检测细胞生存率 | 第12页 |
| 2.5.1 实验步骤 | 第12页 |
| 2.5.2 协同效应分析 | 第12页 |
| 2.6 流式检测细胞周期及凋亡 | 第12-13页 |
| 2.6.1 原理 | 第12-13页 |
| 2.6.2 步骤 | 第13页 |
| 2.7 Realtime-PCR检测相关基因表达 | 第13-15页 |
| 2.7.1 采用Trizol Reagent提取总RNA,简要操作步骤如下 | 第13-14页 |
| 2.7.2 RNA浓度和纯度的测定 | 第14页 |
| 2.7.3 cDNA合成 | 第14页 |
| 2.7.4 Real-time PCR反应：SYBR Green RT-PCR实验 | 第14-15页 |
| 2.8 Westren blot检测相关蛋白表达 | 第15-19页 |
| 2.8.1 实验试剂的配置 | 第15-16页 |
| 2.8.2 实验步骤 | 第16-19页 |
| 2.9 统计学分析 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-28页 |
| 3.1 联合作用对膀胱肿瘤细胞的协同作用分析 | 第20-21页 |
| 3.2 流式细胞术检测细胞周期和凋亡 | 第21-24页 |
| 3.3 Real time PCR检测对肿瘤细胞凋亡的影响 | 第24页 |
| 3.4 Real time PCR检测对肿瘤细胞自噬的影响 | 第24-25页 |
| 3.5 Real time PCR检测对肿瘤细胞CAR的影响 | 第25-26页 |
| 3.6 Western blot检测对膀胱肿瘤细胞E1A、Bax、Bcl-2、细胞色素C蛋白表达影响 | 第26-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 4.1 存在问题及解决办法 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-38页 |
| 在学期间的研究成果 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39页 |
