摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第1章 前言 | 第10-12页 |
第2章 材料和方法 | 第12-25页 |
2.1 试剂和材料 | 第12-14页 |
2.1.1 主要试剂 | 第12-13页 |
2.1.2 主要仪器 | 第13页 |
2.1.3 主要试剂配制 | 第13-14页 |
2.2 实验方法和步骤 | 第14-24页 |
2.2.1 胶质瘤标本及瘤周正常组织标本 | 第14-16页 |
2.2.2 HRP免疫组织化学染色 | 第16-18页 |
2.2.3 胶质瘤标本组织DNA提取 | 第18-19页 |
2.2.4 DNA亚硫酸氢盐修饰 | 第19-21页 |
2.2.5 甲基化特异性PCR | 第21-22页 |
2.2.6 以肿瘤组织提取的DNA为模板进行甲基化扩增,产物进行琼脂糖凝胶电泳 | 第22-24页 |
2.2.7 变性高效液相色谱(DHPLC)检测甲基化 | 第24页 |
2.3 统计学数据分析 | 第24-25页 |
第3章 结果 | 第25-31页 |
3.1 胶质瘤MGMT蛋白表达的免疫组化检测 | 第25-26页 |
3.2 胶质瘤标本组织DNA提取后浓度选择 | 第26-27页 |
3.3 胶质瘤标本MGMT基因启动子区MSP结果 | 第27-28页 |
3.4 变性高效液相色谱(DHPLC)检测甲基化情况 | 第28-29页 |
3.5 MGMT基因启动子区甲基化与胶质瘤患者年龄、性别及病理诊断之间的关系 | 第29-31页 |
第4章 讨论 | 第31-35页 |
4.1 DNA甲基化与肿瘤之间的关系 | 第31-32页 |
4.2 MGMT表达阳性及基因启动子区甲基化与胶质瘤 | 第32-34页 |
4.3 MGMT基因启动子区甲基化检测方法 | 第34-35页 |
第5章 结论与展望 | 第35-36页 |
5.1 结论 | 第35页 |
5.2 展望 | 第35-36页 |
致谢 | 第36-37页 |
参考文献 | 第37-39页 |
综述 | 第39-44页 |
参考文献 | 第43-44页 |