| 摘要 | 第5-9页 |
| abstract | 第9-14页 |
| 英文缩略词表 | 第15-18页 |
| 第1章 综述 | 第18-30页 |
| 1 表观遗传简介 | 第18页 |
| 2 表观遗传机制与衰老 | 第18-25页 |
| 2.1 DNA甲基化与衰老 | 第19-21页 |
| 2.2 组蛋白修饰与衰老 | 第21-23页 |
| 2.3 非编码RNAs与衰老 | 第23-24页 |
| 2.4 DNA甲基化与组蛋白修饰共同作用于衰老 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-30页 |
| 第2章 实验研究 | 第30-68页 |
| 1 实验材料 | 第30-32页 |
| 1.1 实验动物 | 第30页 |
| 1.2 药物制备 | 第30-31页 |
| 1.3 主要试剂 | 第31-32页 |
| 1.4 主要仪器 | 第32页 |
| 2 实验方法 | 第32-44页 |
| 2.1 含药血清的制备 | 第32页 |
| 2.2 分离、培养原代睾丸间质(Leydig)细胞 | 第32-33页 |
| 2.3 Leydig细胞的鉴定 | 第33页 |
| 2.4 细胞衰老模型建立、鉴定 | 第33-34页 |
| 2.5 MTT筛选单体化合物作用最适浓度 | 第34-35页 |
| 2.6 细胞分组 | 第35页 |
| 2.7 实时荧光定量PCR | 第35-38页 |
| 2.8 甲基化特异性PCR(MSP) | 第38-41页 |
| 2.9 染色质免疫共沉淀(ChIP) | 第41-44页 |
| 2.10 统计分析 | 第44页 |
| 3 实验结果 | 第44-60页 |
| 3.1 建立细胞衰老模型最适条件 | 第44-45页 |
| 3.2 MTT筛选单体化合物作用最适浓度 | 第45-49页 |
| 3.3 何首乌饮及其单体化合物对Ttc29的甲基化调控作用 | 第49-51页 |
| 3.4 何首乌饮及其单体化合物对AXL的甲基化调控作用 | 第51-53页 |
| 3.5 何首乌饮及其单体化合物对wnt2b的甲基化调控作用 | 第53-55页 |
| 3.6 何首乌饮及其单体化合物对C-myb的甲基化调控作用 | 第55-58页 |
| 3.7 何首乌饮及其单体化合物对MAPK10的甲基化调控作用 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-64页 |
| 5 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读硕士期间取得的学术成果 | 第69页 |
