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黄牛肌肉生长发育相关基因甲基化鉴定及IGF2和ZBED6基因的转录调控研究

摘要第6-9页
ABSTRACT第9-12页
前言第18-19页
文献综述第19-36页
    第一章 表观遗传学和 DNA 甲基化研究概述第19-30页
        1.1 表观遗传学研究概述第19-20页
            1.1.1 表观遗传学与表观遗传第19页
            1.1.2 表观遗传学的研究内容及其特点第19-20页
        1.2 表观遗传学所涉及的主要机制第20-24页
            1.2.1 DNA 甲基化第20-21页
            1.2.2 非编码 RNA 调控!第21-23页
            1.2.3 组蛋白修饰第23-24页
            1.2.4 染色质重塑第24页
        1.3 DNA 甲基化抑制基因表达的机制第24-25页
        1.4 DNA 甲基化的生物学功能第25-26页
            1.4.1 维持基因组稳定第25页
            1.4.2 调控基因表达第25页
            1.4.3 参与其它表观遗传学修饰第25页
            1.4.4 调节动物生长发育第25页
            1.4.5 影响杂种优势第25-26页
            1.4.6 影响老化第26页
        1.5 DNA 甲基化的检测方法第26-29页
            1.5.1 DNA 甲基化与 CpG 岛第26页
            1.5.2 全基因组甲基化模式(pattern)与甲基化谱(profiling)分析第26-27页
            1.5.3 候选基因特异位点甲基化水平分析第27-29页
        1.6 小结第29-30页
    第二章 印迹基因 IGF2 和转录因子 ZBED6 研究概述第30-36页
        2.1 IGF2 基因的研究概述第30-31页
            2.1.1 IGFs 系统的组成及其生物学功能第30页
            2.1.2 IGF2 基因的印迹调控现象第30-31页
            2.1.3 IGF2 基因与肌肉生长发育的关系第31页
        2.2 ZBED6 基因的研究概述第31-35页
            2.2.1 锌指蛋白的结构与功能第31-32页
            2.2.2 ZBED 基因家族成员概述第32-33页
            2.2.3 ZBED6 基因的发现第33-35页
            2.2.4 ZBED6 基因的功能第35页
        2.3 小结第35-36页
实验研究第36-174页
    第三章 黄牛肌肉生长发育相关甲基化基因的筛选及其功能鉴定第36-89页
        3.1 材料与方法第37-41页
            3.1.1 试验动物第37页
            3.1.2 样品采集第37页
            3.1.3 RNA 的提取、检测和 cDNA 合成第37页
            3.1.4 DNA 的提取与检测第37-38页
            3.1.5 实时定量 PCR(QPCR)分析第38-39页
            3.1.6 MeDIP-Seq 文库制备流程第39-40页
            3.1.7 MeDIP-Seq 信息分析流程第40-41页
        3.2 MeDIP-Seq 高通量信息分析第41-44页
            3.2.1 MeDIP-Seq 数据处理第41-42页
            3.2.2 MeDIP-Seq 序列与参考序列的比对第42页
            3.2.3 MeDIP-Seq 数据的全基因组分布趋势第42页
            3.2.4 MeDIP-Seq 数据高甲基化富集区域(Peak)分析第42-43页
            3.2.5 基于高甲基化富集区域(Peak)的两个样品间差异性分析第43-44页
        3.3 MeDIP-Seq 和 RNA-Seq 的联合分析第44-46页
            3.3.1 Reads 在基因组上的比对情况及分布第44页
            3.3.2 全基因组水平上基因表达与甲基化的分布规律第44-45页
            3.3.3 各表达水平基因在基因及附近区域的甲基化修饰第45页
            3.3.4 各类甲基化修饰区域基因的平均表达水平第45页
            3.3.5 样品间基因甲基化修饰对表达的调控第45-46页
            3.3.6 两样品间甲基化与表达呈负相关的基因的功能分析第46页
        3.4 MeDIP-Seq 高通量测序结果与分析第46-65页
            3.4.1 牛基因组 DNA 样品的检测第46-47页
            3.4.2 MeDIP-Seq 数据处理第47页
            3.4.3 MeDIP-Seq 序列与参考序列的比对第47页
            3.4.4 MeDIP-Seq 测序数据全基因组分布趋势第47-53页
            3.4.5 MeDIP-Seq 数据高甲基化富集区域(Peak)分析第53-58页
            3.4.6 基于高甲基化区域(Peak)的多样品间甲基化差异性分析第58-65页
        3.5 MeDIP-Seq 和 RNA-Seq 测序结果及其联合分析第65-86页
            3.5.1 Reads 在基因组上的比对情况及分布第65-67页
            3.5.2 全基因组水平上基因表达与甲基化的分布规律第67-69页
            3.5.3 各表达水平基因在基因及附近区域的甲基化修饰第69-71页
            3.5.4 各类甲基化修饰区域基因的平均表达水平第71-73页
            3.5.5 样品间基因甲基化修饰对表达的调控第73-75页
            3.5.6 两样品间甲基化与表达呈负相关的基因的功能分析第75-78页
            3.5.7 两样品间启动子区甲基化与表达呈负相关的基因的 QPCR 验证分析第78-86页
        3.6 讨论第86-87页
        3.7 小结第87-89页
    第四章 黄牛 IGF2 和 ZBED6 基因 mRNA 表达及其与 DNA 甲基化水平相关性研究第89-106页
        4.1 材料与方法第89-96页
            4.1.1 试验动物第89页
            4.1.2 样品采集第89-90页
            4.1.3 RNA 的提取、检测和 cDNA 合成第90页
            4.1.4 DNA 的提取与检测第90页
            4.1.5 实时定量 PCR(QPCR)分析第90页
            4.1.6 亚硫酸氢盐测序 PCR(BSP)第90-92页
            4.1.7 结合重亚硫酸盐处理和酶切(COBRA)分析第92-96页
            4.1.8 统计分析第96页
        4.2 结果第96-104页
            4.2.1 实时定量 PCR(QPCR)分析第96-98页
            4.2.2 亚硫酸氢盐测序 PCR(BSP)分析第98-102页
            4.2.3 结合重亚硫酸盐处理和酶切(COBRA)分析第102-104页
        4.3 讨论第104-105页
        4.4 小结第105-106页
    第五章 黄牛 IGF2 和 ZBED6 基因 SNPs 检测及其与生长性状的效应分析第106-122页
        5.1 材料与方法第106-109页
            5.1.1 实验动物第106-107页
            5.1.2 主要试剂第107-108页
            5.1.3 候选基因 SNPs 的筛查第108页
            5.1.4 资料的统计与分析第108-109页
        5.2 结果与分析第109-120页
            5.2.1 候选基因DNA池测序分析第109页
            5.2.2 利用Forced PCR-RFLP检测SNPs第109-112页
            5.2.3 候选基因SNPs的群体遗传参数分析第112-113页
            5.2.4 候选基因SNPs的连锁不平衡和单倍型分析第113-116页
            5.2.5 候选基因SNPs与生长性状的关联分析第116-119页
            5.2.6 候选基因SNPs组合基因型与生长性状的关联分析第119-120页
        5.3 讨论第120-121页
        5.4 小结第121-122页
    第六章 转录因子 ZBED6 对 IGF2 基因转录调控研究第122-144页
        6.1 材料与方法第122-133页
            6.1.1 试验材料第122-123页
            6.1.2 试验仪器第123页
            6.1.3 试剂配制第123页
            6.1.4 生物信息学分析转录因子结合位点第123页
            6.1.5 双色荧光报告载体的构建第123-129页
            6.1.6 过表达载体的构建第129-131页
            6.1.7 细胞培养和转染第131-132页
            6.1.8 荧光素酶活性分析第132页
            6.1.9 实时定量 PCR(QPCR)分析第132-133页
            6.1.10 Western Blot 分析第133页
            6.1.11 统计分析第133页
        6.2 结果第133-142页
            6.2.1 ZBED6 基因启动子区域转录因子分析第133-134页
            6.2.2 ZBED6 基因启动子区域活性分析第134-137页
            6.2.3 IGF2 基因定点突变重组体启动子活性分析第137页
            6.2.4 过表达 ZBED6 对 IGF2 启动子活性的影响第137-139页
            6.2.5 不同单倍型个体 ZBED6 和 IGF2 表达量比较第139-140页
            6.2.6 ZBED6 对 IGF2 转录调控的影响第140-142页
        6.3 讨论第142-143页
        6.4 小结第143-144页
    第七章 ZBED6 基因腺病毒干扰载体的构建及其功能研究第144-161页
        7.1 材料与方法第144-153页
            7.1.1 试验材料第144-145页
            7.1.2 试验仪器第145页
            7.1.3 pDsRed1-N1-ZBED6 表达载体的构建第145-148页
            7.1.4 pENTR/CMV-GFP/U6-shRNA 载体的构建第148-151页
            7.1.5 有效 shRNA 序列的筛选第151页
            7.1.6 重组 ZBED6-shRNA 腺病毒载体构建与鉴定第151-152页
            7.1.7 重组 shRNA 腺病毒包装、扩增及滴度测定第152页
            7.1.8 重组 shRNA 腺病毒的滴度测定第152页
            7.1.9 最佳感染强度的确定第152-153页
            7.1.10 牛原代肌肉细胞的培养第153页
            7.1.11 重组 shRNA 腺病毒干扰效果研究第153页
        7.2 结果与分析第153-160页
            7.2.1 pDsRed1-N1-ZBED6 载体的构建第153页
            7.2.2 pENTR/CMV-GFP/U6-shRNA 载体的构建第153-155页
            7.2.3 有效 shRNA 的筛选第155-156页
            7.2.4 重组 shRNA 腺病毒载体的包装及扩增第156-157页
            7.2.5 重组 shRNA 腺病毒滴度测定第157-158页
            7.2.6 最佳感染强度的确定第158页
            7.2.7 重组 shRNA 腺病毒载体的干扰效率第158页
            7.2.8 重组 shRNA 腺病毒载体干扰效果研究第158-160页
        7.3 讨论第160页
        7.4 小结第160-161页
    第八章 ZBED6 基因腺病毒过表达载体的构建及其功能研究第161-172页
        8.1 材料与方法第161-166页
            8.1.1 试验材料第161-162页
            8.1.2 试验仪器第162页
            8.1.3 腺病毒穿梭载体 pAdTrack/CMV-ZBED6 构建第162-164页
            8.1.4 腺病毒穿梭载体 Pme I 线性化第164页
            8.1.5 腺病毒穿梭载体与骨架载体 pAdEasy-1 的重组第164-166页
            8.1.6 重组腺病毒 Ad-ZBED6 的包装与扩增第166页
            8.1.7 重组腺病毒 Ad-ZBED6 滴度测定第166页
            8.1.8 最佳感染强度的确定第166页
            8.1.9 重组腺病毒 Ad-ZBED6 的功能研究第166页
        8.2 结果与分析第166-171页
            8.2.1 穿梭载体 pAdTrack/CMV-ZBED6 的构建第166页
            8.2.2 重组质粒 Ad-ZBED6 的 Pac I 酶切鉴定第166-167页
            8.2.3 腺病毒载体 Ad-ZBED6 的包装及扩增第167-168页
            8.2.4 重组过表达腺病毒滴度测定第168-169页
            8.2.5 最佳感染强度的确定第169页
            8.2.6 重组腺病毒 Ad-ZBED6 的超表达效率第169页
            8.2.7 重组腺病毒 Ad-ZBED6 的功能研究第169-171页
        8.3 讨论第171页
        8.4 小结第171-172页
    第九章 结论与创新点第172-174页
        9.1 结论第172-173页
        9.2 创新点第173-174页
参考文献第174-187页
附录(第三章)第187-228页
附录(第四章)第228-230页
附录(第五章)第230-256页
附录(第六章)第256-281页
附录(第七章)第281-287页
缩略词第287-289页
致谢第289-290页
个人简介第290-293页

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