| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 英汉縮略语名词对照 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一章 RANK在巨噬细胞中的表达 | 第18-34页 |
| 1.1 引言 | 第18-19页 |
| 1.2 材料与方法 | 第19-25页 |
| 1.2.1 主要试剂 | 第19页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.2.3 细胞的解冻、计数和传代培养 | 第20-21页 |
| 1.2.4 巨噬细胞的诱导 | 第21页 |
| 1.2.5 巨噬细胞的鉴定 | 第21-22页 |
| 1.2.6 UHMWPE颗粒的制备、鉴定和内毒素检测 | 第22-23页 |
| 1.2.7 MTT法检测UHMWPE、凝血酶对巨噬细胞的最佳浓度 | 第23页 |
| 1.2.8 Realtime-PCR检测经不同处理后巨噬细胞中RANK mRNA 表达的变化 | 第23-25页 |
| 1.2.9 统计学分析 | 第25页 |
| 1.3 结果 | 第25-31页 |
| 1.3.1 巨噬细胞的鉴定 | 第25-28页 |
| 1.3.2 UHMWPE颗粒的制备和鉴定 | 第28-29页 |
| 1.3.3 MTT法检测UHMWPE、凝血酶对巨噬细胞的最佳浓度 | 第29-30页 |
| 1.3.4 Realtime-PCR 检测经不同处理后巨噬细胞中RANK mRNA 表达的变化 | 第30-31页 |
| 1.4 讨论 | 第31-33页 |
| 1.5 结论 | 第33-34页 |
| 第二章 RANKL、OPG在HFOB1.19成骨细胞中的表达 | 第34-44页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 材料与方法 | 第34-37页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第34-35页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第35页 |
| 2.2.3 hFOB1.19细胞的解冻、计数和传代培养 | 第35-36页 |
| 2.2.4 MTT法检测UHMWPE、凝血酶对hFOB1.19细胞的最佳浓度 | 第36页 |
| 2.2.5 不同处理后hFOB1.19细胞中RANKL、OPG mRNA表达的变化 | 第36页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第36-37页 |
| 2.3 结果 | 第37-40页 |
| 2.3.1 hFOB1.19细胞培养的形态 | 第37页 |
| 2.3.2 MTT法检测UHMWPE、血浆凝固酶对hFOB1.19细胞的最佳浓度 | 第37-38页 |
| 2.3.3 Realtime-PCR检测经不同处理后hFOB1.19成骨细胞中RANKL、OPGmRNA表达的变化 | 第38-40页 |
| 2.4 讨论 | 第40-43页 |
| 2.5 结论 | 第43-44页 |
| 第三章 RANKL/RANK/OPG系统在THA术后感染界膜中的表达 | 第44-64页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 材料与方法 | 第44-53页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.2 主要仪器和设备 | 第45-46页 |
| 3.2.3 标本纳入标准与患者资料 | 第46-47页 |
| 3.2.4 术前、术中相关检查与处理 | 第47-48页 |
| 3.2.5 电镜观察三种组织的微观形态 | 第48-49页 |
| 3.2.6 免疫组化法测定组织中RANKL、RANK和OPG的表达 | 第49-50页 |
| 3.2.7 Realtime-QPCR检测组织中RANKL、RANK和OPG的表达 | 第50-51页 |
| 3.2.8 Western-blot检测RANKL、RANK和OPG的表达 | 第51-53页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第53页 |
| 3.3 结果 | 第53-59页 |
| 3.3.1 微观观察结果 | 第53-54页 |
| 3.3.2 免疫组化法测定三种组织中RANKL、RANK和OPG的表达 | 第54-56页 |
| 3.3.3 Realtime-QPCR测定三种组织中RANKL、RANK和OPG的表达 | 第56-57页 |
| 3.3.4 Western blot测定三种组织中RANKL、RANK和OPG的表达 | 第57-59页 |
| 3.4 讨论 | 第59-63页 |
| 3.5 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 综述 | 第72-102页 |
| 参考文献 | 第90-102页 |
| 攻读学位期间主要研究成果 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
