| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 符号说明 | 第8-10页 |
| 文献综述 | 第10-16页 |
| 1 PEDV的综述 | 第10-12页 |
| 1.1 PEDV的基因组成及蛋白功能 | 第10-11页 |
| 1.2 PEDV的细胞培养 | 第11页 |
| 1.3 PEDV疫苗的研究 | 第11-12页 |
| 1.4 PEDV的诊断 | 第12页 |
| 2 自噬 | 第12-15页 |
| 2.1 自噬的概述 | 第12页 |
| 2.2 自噬的类型 | 第12-13页 |
| 2.3 自噬调节的信号通路 | 第13-15页 |
| 2.4 自噬的检测方法 | 第15页 |
| 3 病毒感染与自噬 | 第15-16页 |
| 3.1 病毒自噬的概述 | 第15-16页 |
| 3.2 PEDV自噬概述 | 第16页 |
| 3.3 研究目的及意义 | 第16页 |
| PEDV诱导细胞自噬及其机制研究 | 第16-43页 |
| 1 材料 | 第16-17页 |
| 1.1 毒株、细胞 | 第16页 |
| 1.2 细胞培养相关试剂及药物 | 第16-17页 |
| 1.3 主要仪器 | 第17页 |
| 2 方法 | 第17-22页 |
| 2.1 主要溶剂及试剂配制 | 第17-18页 |
| 2.2 细胞的培养 | 第18页 |
| 2.3 病毒感染及药物处理 | 第18-19页 |
| 2.4 病毒滴度的测定 | 第19页 |
| 2.5 免疫蛋白印迹样品的制备 | 第19-20页 |
| 2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳SDS-PAGE和转膜 | 第20-21页 |
| 2.7 化学液发光、曝光 | 第21页 |
| 2.8 自噬小体与溶酶体共定位观察 | 第21-22页 |
| 2.9 数据统计分析 | 第22页 |
| 3 结果 | 第22-41页 |
| 3.1 PEDV感染Vero细胞上调LC3-Ⅱ且下调p62的表达水平 | 第22-24页 |
| 3.2 PEDV诱导Vero细胞发生完全自噬 | 第24-25页 |
| 3.3 自噬抑制剂对PEDV感染Vero细胞后LC3蛋白的表达水平的影响 | 第25-26页 |
| 3.4 荧光共聚焦观察自噬抑制剂作用下自噬阻断情况 | 第26-28页 |
| 3.5 PEDV诱导Vero细胞自噬对病毒复制的影响 | 第28-30页 |
| 3.6 PEDV诱导自噬为mTOR非依赖性 | 第30-31页 |
| 3.7 PEDV感染Vero细胞后JNK信号通路变化 | 第31-32页 |
| 3.8 JNK抑制剂SP-600125对PEDV诱导细胞自噬的影响 | 第32-34页 |
| 3.9 JNK抑制剂SP-600125对PEDV诱导细胞自噬病毒复制的影响 | 第34-35页 |
| 3.10 PEDV感染Vero细胞后AMPK-ULK1信号通路的变化 | 第35-37页 |
| 3.11 ULK1抑制剂SBI可抑制PEDV诱导Vero细胞自噬 | 第37-39页 |
| 3.12 ULK1抑制剂SBI对PEDV诱导细胞自噬病毒复制的影响 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 全文结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
