| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 插图和附表清单 | 第9-10页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第11-20页 |
| 1.1 植物雄性不育的类型 | 第11-13页 |
| 1.1.1 细胞质雄性不育 | 第11-12页 |
| 1.1.2 细胞核雄性不育 | 第12页 |
| 1.1.3 核质互作型雄性不育 | 第12-13页 |
| 1.2 甜菜雄性不育系制种的应用与研究概况 | 第13-14页 |
| 1.2.1 利用雄性不育系制种的意义 | 第13-14页 |
| 1.2.2 细胞质雄性不育在甜菜的育种中的应用 | 第14页 |
| 1.3 甜菜细胞质雄性不育系的研究与利用概况 | 第14-15页 |
| 1.3.1 国外对于甜菜细胞质雄性不育系的研究与利用概况 | 第14-15页 |
| 1.3.2 我国甜菜单胚雄性不育品种选育与利用进展 | 第15页 |
| 1.4 雄性不育系中的线粒体的研究概况 | 第15-17页 |
| 1.4.1 线粒体 | 第15-16页 |
| 1.4.2 线粒体的细胞学机制研究概况 | 第16页 |
| 1.4.3 线粒体遗传学机制研究概况 | 第16-17页 |
| 1.4.3.1 线粒体基因组特征 | 第16-17页 |
| 1.4.3.2 甜菜线粒体基因组的研究进展 | 第17页 |
| 1.5 植物线粒体DNA与细胞质雄性不育 | 第17-18页 |
| 1.5.1 甜菜线粒体DNA与细胞质雄性不育的研究 | 第17-18页 |
| 1.6 获得植物雄性不育系的途径 | 第18-19页 |
| 1.6.1 营养缺陷型雄性不育系的研制技术 | 第18页 |
| 1.6.2 原生质融合技术 | 第18页 |
| 1.6.3 回交转育技术 | 第18-19页 |
| 1.7 甜菜CMS分子标记技术展望 | 第19页 |
| 1.8 本研究的目的及意义 | 第19-20页 |
| 2 甜菜细胞质育性VNTR分子标记方法的优化 | 第20-25页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1.1 植物材料 | 第20页 |
| 2.1.1.2 引物 | 第20页 |
| 2.1.1.3 试剂 | 第20页 |
| 2.1.1.4 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.2 方法 | 第21-23页 |
| 2.1.2.1 常用试剂的配制 | 第21页 |
| 2.1.2.2 线粒体DNA提取 | 第21-22页 |
| 2.1.2.3 线粒体DNA的1%的琼脂糖电泳检测 | 第22-23页 |
| 2.1.2.4 DNA溶液的纯度和浓度的估算 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-25页 |
| 2.2.1 不同样本线粒体DNA及基因组DNA提取与结果的比较分析 | 第23-24页 |
| 2.2.2 不同DNA模板对PCR结果影响的比较分析 | 第24-25页 |
| 2.3 小结 | 第25页 |
| 3 拟选材料细胞质育性VNTR分子标记鉴定 | 第25-29页 |
| 3.1 材料与方法 | 第26页 |
| 3.1.1 材料 | 第26页 |
| 3.1.2 方法 | 第26页 |
| 3.1.2.1 PCR扩增 | 第26页 |
| 3.1.2.2 电泳 | 第26页 |
| 3.2 结果与分析 | 第26-29页 |
| 3.3 小结 | 第29页 |
| 4 入选材料SSR分子标记遗传多样性研究 | 第29-41页 |
| 4.1 材料与方法 | 第29-33页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第29-32页 |
| 4.1.2 试剂和仪器 | 第32-33页 |
| 4.1.2.1 DNA提取和扩增的耗材及仪器 | 第32页 |
| 4.1.2.2 DNA的提取和扩增主要试剂 | 第32页 |
| 4.1.2.3 SSR引物 | 第32-33页 |
| 4.1.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳的仪器和试剂 | 第33页 |
| 4.1.3.1 仪器及耗材 | 第33页 |
| 4.1.3.2 材料和试剂 | 第33页 |
| 4.2 方法 | 第33-35页 |
| 4.2.1 CTAB法提取甜菜基因组DNA | 第33-34页 |
| 4.2.2 PCR反应体系 | 第34页 |
| 4.2.3 PCR扩增程序 | 第34页 |
| 4.2.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第34-35页 |
| 4.2.4.1 玻璃板的前期准备 | 第34-35页 |
| 4.2.4.2 6%的聚丙烯酰胺凝胶的制备 | 第35页 |
| 4.2.4.3 预电泳 | 第35页 |
| 4.2.4.4 电泳 | 第35页 |
| 4.2.4.5 银染 | 第35页 |
| 4.3 结果与分析 | 第35-41页 |
| 4.3.1 DNA浓度和质量检测 | 第35-36页 |
| 4.3.2 SSR引物筛选 | 第36-37页 |
| 4.3.3 SSR标记的多态性分析 | 第37-38页 |
| 4.3.4 聚类分析 | 第38-41页 |
| 4.4 小结 | 第41页 |
| 5 结论与讨论 | 第41-44页 |
| 5.1 结论 | 第41-42页 |
| 5.1.1 优化了甜菜线粒体DNA提取方法 | 第41页 |
| 5.1.2 简化了甜菜细胞质育性VNTR分子标记鉴定方法 | 第41页 |
| 5.1.3 完成了160对甜菜细胞质育性鉴定 | 第41页 |
| 5.1.4 入选材料SSR分子标记遗传多样性研究 | 第41-42页 |
| 5.2 讨论 | 第42-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |
