| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩写一览表 | 第11-15页 |
| 1 引言 | 第15-27页 |
| 1.1 糖尿病 | 第15-18页 |
| 1.1.1 糖尿病简介 | 第15-16页 |
| 1.1.2 降糖肽研究进展 | 第16-18页 |
| 1.2 Galectin-3与2型糖尿病 | 第18-21页 |
| 1.2.1 Galectin-3 | 第18-19页 |
| 1.2.2 Galectin-3在2型糖尿病并发症中的诊断价值 | 第19页 |
| 1.2.3 Galectin-3参与葡萄糖代谢 | 第19-21页 |
| 1.2.4 Galectin-3与胰岛素抵抗 | 第21页 |
| 1.3 糖尿病主要葡萄糖代谢机制研究 | 第21-23页 |
| 1.4 牛乳铁蛋白简介 | 第23-24页 |
| 1.5 计算机辅助药物设计 | 第24-25页 |
| 1.6 课题研究技术路线 | 第25页 |
| 1.7 课题研究意义 | 第25-27页 |
| 2 降糖肽分子对接和药物合成 | 第27-33页 |
| 2.1 实验数据来源与设备 | 第27-28页 |
| 2.1.1 使用设备 | 第27页 |
| 2.1.2 数据来源 | 第27页 |
| 2.1.3 筛选出的小分子肽与Galectin-3进行分子对接 | 第27-28页 |
| 2.1.4 拟肽合成及鉴定 | 第28页 |
| 2.2 实验结果讨论 | 第28-32页 |
| 2.2.1 分子对接虚筛结果 | 第28-30页 |
| 2.2.2 拟肽合成结果 | 第30-32页 |
| 2.3 结果分析 | 第32-33页 |
| 3 拟肽对胰岛素抵抗细胞葡萄糖代谢的影响 | 第33-47页 |
| 3.1 实验材料、仪器及试剂 | 第33-35页 |
| 3.1.1 实验细胞 | 第33页 |
| 3.1.2 实验试剂及设备 | 第33-34页 |
| 3.1.3 实验培养基及试剂配制 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.2.1 建立细胞胰岛素抵抗模型 | 第35-37页 |
| 3.2.2 拟肽作用于HepG2胰岛素抵抗细胞模型测试葡萄糖消耗 | 第37-38页 |
| 3.2.3 胰岛素抵抗3T3-L1诱导模型染色鉴定 | 第38页 |
| 3.2.4 胰岛素对3T3L1细胞增殖的影响 | 第38页 |
| 3.3 实验结果 | 第38-45页 |
| 3.3.1 3T3-L1细胞诱导分化细胞形态学观察结果 | 第38-40页 |
| 3.3.2 拟肽对HepG2细胞葡萄糖消耗影响 | 第40-43页 |
| 3.3.3 拟肽促3T3-L1细胞分化成脂肪细胞影响 | 第43-44页 |
| 3.3.4 拟肽对细胞增殖影响结果 | 第44-45页 |
| 3.4 实验结果分析 | 第45-47页 |
| 4 LFcinB衍生物影响胰岛素受体及相关信号通路转导机制机理研究 | 第47-57页 |
| 4.1 实验试剂与设备 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第47-48页 |
| 4.1.2 实验设备 | 第48页 |
| 4.2 方法 | 第48-52页 |
| 4.2.1 细胞蛋白提取 | 第48-49页 |
| 4.2.2 BCA法测蛋白浓度 | 第49-50页 |
| 4.2.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第50-52页 |
| 4.3 实验结果 | 第52-56页 |
| 4.3.1 LfcinB衍生物影响Galectin-3总蛋白在胰岛素抵抗模型下表达变化 | 第52-54页 |
| 4.3.2 LfcinB衍生物对胰岛素受体信号通路影响 | 第54-56页 |
| 4.4 实验结果分析 | 第56-57页 |
| 5 荧光免疫法检测拟肽对GLUT-4细胞膜转位的蛋白表达 | 第57-63页 |
| 5.1 材料和设备 | 第57-58页 |
| 5.1.1 实验试剂 | 第57页 |
| 5.1.2 实验设备 | 第57-58页 |
| 5.1.3 实验步骤 | 第58页 |
| 5.2 实验结果 | 第58-61页 |
| 5.2.1 LFcinB衍生物影响Galectin-3在细胞水平表达 | 第58-59页 |
| 5.2.2 LfcinB衍生物影响Glut-4在细胞膜上的转位表达 | 第59-61页 |
| 5.3 实验结果分析 | 第61-63页 |
| 6 结论与展望 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 个人简历、在校期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第71页 |
