首页--生物科学论文--分子生物学论文--基因工程(遗传工程)论文

二种特定重复序列蛋白的高效表达及生化工程应用研究

致谢第5-6页
摘要第6-8页
Abstract第8-9页
第一章 绪论第15-33页
    1.1 前言第15-16页
    1.2 重组胶原蛋白的研究进展第16-24页
        1.2.1 胶原蛋白和类胶原蛋白第16-17页
        1.2.2 胶原蛋白的生物合成第17-18页
        1.2.3 重组胶原蛋白的应用第18-20页
        1.2.4 胶原蛋白的重组表达进展第20-24页
        1.2.5 重组胶原蛋白的分离纯化第24页
    1.3 重组类弹性蛋白多肽的研究进展第24-28页
        1.3.1 弹性蛋白和类弹性蛋白多肽第24-25页
        1.3.2 重组类弹性蛋白多肽的应用进展第25-28页
    1.4 酶法合成α-酮戊二酸的研究进展第28-31页
        1.4.1 α -酮戊二酸的简介第28-29页
        1.4.2 α -酮戊二酸的生产方法第29-30页
        1.4.3 酶法合成α-酮戊二酸的研究进展第30-31页
    1.5 本课题的研究思路和主要内容第31-33页
第二章 类人胶原蛋白HLC在大肠杆菌中的重组表达第33-52页
    2.1 前言第33-34页
    2.2 材料和方法第34-42页
        2.2.1 菌株和质粒第34页
        2.2.2 工具酶和主要试剂第34-35页
        2.2.3 主要仪器第35-36页
        2.2.4 主要培养基和缓冲液第36页
        2.2.5 引物设计与合成第36-37页
        2.2.6 表达载体pAC-HLC-P4H-ALO的构建第37-38页
        2.2.7 重组HLC在大肠杆菌中的表达第38-39页
        2.2.8 重组HLC表达条件的优化第39页
        2.2.9 重组HLC在10 L发酵罐上的放大培养第39-40页
        2.2.10 重组HLC的亲和纯化第40页
        2.2.11 分析测定方法第40-42页
    2.3 结果与讨论第42-51页
        2.3.1 重组表达载体pAC-HLC-P4H-ALO的构建第42-44页
        2.3.2 重组HLC在大肠杆菌中的表达第44页
        2.3.3 最适培养基的选择第44-45页
        2.3.4 诱导条件的优化第45-47页
        2.3.5 重组HLC在10L发酵罐中的表达研究第47-48页
        2.3.6 重组HLC的分离纯化第48-49页
        2.3.7 重组HLC中羟基脯氨酸含量的测定第49-51页
    2.4 小结第51-52页
第三章 化脓链球菌类胶原蛋白Scl2在大肠杆曹中的重组表达第52-66页
    3.1 前言第52页
    3.2 材料和方法第52-57页
        3.2.1 菌株和质粒第52页
        3.2.2 主要仪器第52-53页
        3.2.3 培养基和缓冲液第53页
        3.2.4 引物设计与合成第53页
        3.2.5 Scl2基因的优化及表达载体pET28a-Scl2第53-54页
        3.2.6 表达载体pET28a-Scl2-M的构建第54-55页
        3.2.7 重组Scl2-M的表达第55页
        3.2.8 重组Scl2-M的表达条件优化第55-56页
        3.2.9 重组Scl2-M在10L发酵罐上的放大培养第56页
        3.2.10 重组Scl2-M的纯化第56页
        3.2.11 分析测定方法第56-57页
    3.3 结果与讨论第57-64页
        3.3.1 表达载体pET28a-Scl2和pET28a-Scl2-M的构建第57-58页
        3.3.2 Scl2-M在大肠杆菌中的表达第58-59页
        3.3.3 表达条件的优化第59-62页
        3.3.4 重组Scl2-M在10L发酵罐上的放大研究第62页
        3.3.5 重组Scl2-M的分离纯化第62-63页
        3.3.6 蛋白Scl2-M的活性测定第63-64页
    3.4 小结第64-66页
第四章 Scl2-M和hbFGF蛋白的融合表达和分离纯化第66-78页
    4.1 前言第66页
    4.2 材料和方法第66-70页
        4.2.1 菌株和质粒第66-67页
        4.2.2 主要仪器第67页
        4.2.3 培养基和缓冲液第67页
        4.2.4 基因的设计和合成第67页
        4.2.5 引物的设计和合成第67-68页
        4.2.6 融合蛋白表达载体的构建第68页
        4.2.7 融合蛋白Scl2-M-hbFGF的表达第68-69页
        4.2.8 重组大肠杆菌pET28a-Scl2-M-hbFGF在10 L发酵罐上的放大培养第69页
        4.2.9 融合蛋白Scl2-M-hbFGF的亲和纯化第69页
        4.2.10 融合蛋白Scl2-M-hbFGF的肠激酶酶切第69页
        4.2.11 hbFGF的分离纯化第69页
        4.2.12 分析测定方法第69-70页
    4.3 结果和讨论第70-77页
        4.3.1 表达载体pET28a-Scl2-M-hbFGF的构建第70-71页
        4.3.2 融合蛋白的表达第71-72页
        4.3.3 重组大肠杆菌pET28a-Scl2-M-hbFGF在10 L发酵罐上放大培养第72页
        4.3.4 融合蛋白Scl2-M-hbFGF的亲和纯化第72-74页
        4.3.5 融合蛋白Scl2-M-hbFGF的肠激酶酶切和hbFGF的分离纯化第74-76页
        4.3.6 hbFGF的生物活性测定第76-77页
    4.4 小结第77-78页
第五章 类弹性蛋白多肽和L-谷氨酸氧化酶的融合表达及性质研究第78-96页
    5.1 前言第78-79页
    5.2 材料与方法第79-84页
        5.2.1 菌株和质粒第79页
        5.2.2 主要仪器第79页
        5.2.3 培养基第79页
        5.2.4 引物设计和合成第79-80页
        5.2.5 表达载体pET-LGOX-ELP的构建第80页
        5.2.6 融合蛋白LGOX-ELP的表达第80页
        5.2.7 融合蛋白LGOX-ELP在30 L发酵罐上的放大培养第80-81页
        5.2.8 成熟LGOX的制备第81-82页
        5.2.9 成熟LGOX的酶学性质研究第82-83页
        5.2.10 分析测定方法第83-84页
    5.3 结果与讨论第84-94页
        5.3.1 表达载体pET-LGOX-ELP的构建第84页
        5.3.2 融合蛋白在大肠杆菌中的表达第84-86页
        5.3.3 融合蛋白在30 L发酵罐中的培养第86-88页
        5.3.4 成熟L-GOX的获取第88-89页
        5.3.5 成熟L-GOX的性质研究第89-94页
    5.4 小结第94-96页
第六章 成熟的L谷氨酸氧化酶催化L-谷氨酸生产α-酮戊二酸的研究第96-107页
    6.1 前言第96页
    6.2 材料与方法第96-99页
        6.2.1 实验材料和试剂第96页
        6.2.2 主要实验仪器第96页
        6.2.3 游离的成熟LGOX催化L-谷氨酸生成α-KG的研究第96-98页
        6.2.4 固定化树脂LX-1000HA的活化第98页
        6.2.5 酶的固定化第98页
        6.2.6 固定化酶在3 L发酵罐上催化生成α-KG的研究第98-99页
        6.2.7 固定化酶在800 L发酵罐上催化生成α-KG的研究第99页
        6.2.8 固定化酶在800 L发酵罐上催化生成α-KG的使用次数第99页
        6.2.9 分析测定方法第99页
    6.3 结果与讨论第99-105页
        6.3.1 过氧化氢酶最适添加量的确定第99-101页
        6.3.2 最适底物浓度的确定第101页
        6.3.3 固定化酶在3 L发酵罐上催化生成α-KG的研究第101-103页
        6.3.4 固定化酶在800 L发酵罐上催化生成α-KG的研究第103-104页
        6.3.5 固定化酶在800 L发酵罐上催化生成α-KG的使用次数第104-105页
    6.4 小结第105-107页
第七章 结论与展望第107-111页
    7.1 结论第107-109页
    7.2 创新点第109页
    7.3 展望第109-111页
参考文献第111-125页
作者筒历第125-126页
    教育经历第125页
    攻读博士期间的科研成果第125-126页
    会议论文第126页

论文共126页,点击 下载论文
上一篇:Guddaim(Grewia Tenax.Forssk)Fiori果的营养成分和功能性质及评价其作为潜在食物来源的应用研究
下一篇:九莲城淖尔药用放线菌资源勘探及特境放线菌新资源的多相分类