中文摘要 | 第1-4页 |
ABSTRACT | 第4-10页 |
前言 | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-31页 |
·血管内皮的功能及功能障碍 | 第12-14页 |
·血管内皮细胞与血栓形成 | 第13页 |
·血管内皮细胞与动脉粥样硬化 | 第13页 |
·血管内皮细胞与氧化胁迫 | 第13-14页 |
·内皮细胞与炎症反应 | 第14页 |
·脂质组学研究进展 | 第14-19页 |
·脂质组学的发展 | 第14-16页 |
·脂质组学研究策略 | 第16-19页 |
·脂质提取 | 第16-17页 |
·脂质分离 | 第17页 |
·脂质检测 | 第17-18页 |
·建立脂质组学谱/库 | 第18-19页 |
·生物信息学分析 | 第19页 |
·磷脂、磷脂酶及相关信号转导途径 | 第19-26页 |
·膜磷脂组成对细胞功能的影响 | 第19-20页 |
·磷脂的代谢及调控作用及相关的脂质信号分子 | 第20-24页 |
·花生四烯酸的代谢调控和相关信号转导途径 | 第24-26页 |
·川芎嗪和丁烯苯酞及其药理作用 | 第26-29页 |
·川芎嗪的药理作用 | 第26-27页 |
·对心肌缺血一再灌注损伤的保护作用 | 第26-27页 |
·保护血管内皮和抑制平滑肌细胞增殖的作用 | 第27页 |
·对离子通道的影响 | 第27页 |
·抗血小板凝集作用 | 第27页 |
·丁烯苯酞的药理作用 | 第27-29页 |
·抗肿瘤和抑制细胞增殖作用 | 第27-28页 |
·影响钙离子通道 | 第28页 |
·抗血小板凝集 | 第28-29页 |
·本文研究意义和主要的研究内容 | 第29-31页 |
·研究意义 | 第29页 |
·研究内容 | 第29-31页 |
第二章 基于LC/ESI/MS~n策略构建人脐静脉内皮细胞磷脂图谱 | 第31-53页 |
·材料与方法 | 第32-38页 |
·主要仪器与试剂 | 第32-33页 |
·细胞培养 | 第33-34页 |
·Bradford 法测定蛋白质浓度 | 第34-35页 |
·内皮细胞系EA.hy926 膜磷脂的提取 | 第35-36页 |
·膜磷脂的液相色谱串联质谱(LC/ESI/MS~n)分析 | 第36-38页 |
·统计学处理 | 第38页 |
·结果与讨论 | 第38-52页 |
·细胞膜磷脂定性分析 | 第38-43页 |
·细胞膜磷脂定量分析 | 第43-52页 |
·小结 | 第52-53页 |
第三章 氧化胁迫下EA.hy926 细胞磷脂图谱的变化 | 第53-66页 |
·材料与方法 | 第53-54页 |
·主要仪器与试剂 | 第53页 |
·细胞培养 | 第53页 |
·Bradford 法测定蛋白质浓度 | 第53-54页 |
·内皮细胞系EA.hy926 膜磷脂的提取 | 第54页 |
·膜磷脂的液相色谱串联质谱(LC/ESI/MS~n)分析 | 第54页 |
·多元统计分析 | 第54页 |
·统计学处理 | 第54页 |
·结果与讨论 | 第54-64页 |
·过氧化氢刺激下EA.hy926 细胞磷脂的变化 | 第54-58页 |
·多元统计分析氧化胁迫下细胞磷脂代谢物的变化规律 | 第58-64页 |
·小结 | 第64-66页 |
第四章 川芎嗪、丁烯苯酞作用下EA.hy926 细胞磷脂图谱的变化 | 第66-81页 |
·材料与方法 | 第67-68页 |
·主要仪器与试剂 | 第67页 |
·细胞培养 | 第67页 |
·噻唑兰比色法检测细胞活力 | 第67页 |
·Bradford 法测定蛋白质浓度 | 第67页 |
·内皮细胞系EA.hy926 膜磷脂的提取 | 第67-68页 |
·膜磷脂的液相色谱串联质谱(LC/ESI/MS~n)分析 | 第68页 |
·多元统计分析 | 第68页 |
·统计学处理 | 第68页 |
·结果与讨论 | 第68-80页 |
·川芎嗪和丁烯苯酞对H_20_2诱导损伤细胞的保护作用 | 第68-69页 |
·TMP 和BP 预处理下EA.hy926 细胞磷脂的变化 | 第69-75页 |
·多元统计分析TMP 和BP 预处理细胞磷脂代谢物的变化规律 | 第75-80页 |
·小结 | 第80-81页 |
第五章 抑制剂作用下EA.hy926 细胞磷脂图谱的变化 | 第81-95页 |
·材料与方法 | 第81-83页 |
·主要仪器与试剂 | 第81-82页 |
·细胞培养 | 第82页 |
·噻唑兰比色法检测细胞活力 | 第82页 |
·Bradford 法测定蛋白质浓度 | 第82页 |
·内皮细胞系EA.hy926 膜磷脂的提取 | 第82页 |
·膜磷脂的液相色谱串联质谱(LC/ESI/MS~n)分析 | 第82页 |
·多元统计分析 | 第82页 |
·统计学处理 | 第82-83页 |
·结果与讨论 | 第83-93页 |
·ETYA 和PD98059 对细胞活力的影响 | 第83-84页 |
·ETYA 和PD98059 作用下EA.hy926 细胞磷脂的变化 | 第84-88页 |
·多元统计分析抑制剂预处理细胞磷脂代谢物的变化规律 | 第88-93页 |
·小结 | 第93-95页 |
第六章 磷脂酶及相关信号转导通路的研究 | 第95-108页 |
·材料与方法 | 第95-100页 |
·主要仪器与试剂 | 第95-96页 |
·细胞培养 | 第96页 |
·Bradford 法测定蛋白质浓度 | 第96页 |
·薄层色谱法测定磷脂酶A 的活性 | 第96页 |
·细胞总蛋白提取制备 | 第96-97页 |
·蛋白免疫印迹(Western Blotting) | 第97-98页 |
·花生四烯酸的提取和纯化 | 第98-99页 |
·LC-MS 测定花生四烯酸含量 | 第99-100页 |
·统计学处理 | 第100页 |
·结果与讨论 | 第100-106页 |
·TMP 和BP 对cPLA_2活性的影响 | 第100-103页 |
·药物和抑制剂对cPLA_2和ERK1/2 磷酸化的影响 | 第103-104页 |
·药物和抑制剂对AA 释放的影响 | 第104-106页 |
·药物对脂质代谢的调控的层次特征 | 第106页 |
·小结 | 第106-108页 |
第七章 结论与展望 | 第108-111页 |
·结论 | 第108-109页 |
·创新点 | 第109页 |
·展望 | 第109-111页 |
参考文献 | 第111-131页 |
发表论文和科研情况说明 | 第131-132页 |
附录 | 第132-134页 |
致谢 | 第134页 |