| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 第1章 干扰素α对转染HBX基因Huh-7细胞生物学行为影响 | 第19-35页 |
| 引言 | 第19页 |
| 材料与方法 | 第19-27页 |
| 1.材料 | 第19-21页 |
| 1.1 细胞 | 第19页 |
| 1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 1.4 主要试剂配制方法 | 第21页 |
| 2 研究方法 | 第21-27页 |
| 2.1 携带乙肝病毒X基因慢病毒载体构建 | 第21-23页 |
| 2.2 慢病毒包装 | 第23-24页 |
| 2.3 慢病毒液滴度测定 | 第24-25页 |
| 2.4 细胞慢病毒感染 | 第25-26页 |
| 2.4.1 细胞复苏 | 第25页 |
| 2.4.2 细胞铺板 | 第25-26页 |
| 2.4.3 细胞慢病毒转染 | 第26页 |
| 2.5 细胞迁移和侵袭实验 | 第26页 |
| 2.6 MTT检测 | 第26-27页 |
| 结果 | 第27-32页 |
| 1.携带乙肝病毒X基因慢病毒载体成功构建 | 第27-28页 |
| 2.慢病毒转染 | 第28-29页 |
| 3.细胞迁移实验 | 第29-30页 |
| 4.细胞侵袭实验 | 第30-31页 |
| 5.MTT检测 | 第31-32页 |
| 讨论 | 第32-35页 |
| 第2章 干扰素α对Huh-7细胞JAK-STAT通路相关分子表达的影响 | 第35-48页 |
| 引言 | 第35页 |
| 材料与方法 | 第35-42页 |
| 1.材料 | 第35-38页 |
| 1.1 细胞 | 第35-36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 1.3 引物 | 第36-37页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第37页 |
| 1.5 主要试剂配制方法 | 第37-38页 |
| 2.研究方法 | 第38-42页 |
| 2.1 JAK-STAT通路各相关分子mRNA表达检测 | 第38-41页 |
| 2.2 JAK-STAT通路各相关蛋白Western-blot检测 | 第41-42页 |
| 结果 | 第42-45页 |
| 1 JAK-STAT通路各相关分子mRNA表达检测 | 第42-44页 |
| 1.1 乙肝病毒X基因的表达结果 | 第42-43页 |
| 1.2 JAK-STAT通路各相关分子的mRNA表达结果 | 第43-44页 |
| 2 JAK-STAT通路各相关蛋白WB检测结果 | 第44-45页 |
| 讨论 | 第45-48页 |
| 第3章 JAK-STAT通路各相关分子对干扰素α治疗慢性乙肝的应答预测价值 | 第48-64页 |
| 引言 | 第48-49页 |
| 材料和方法 | 第49-55页 |
| 1 材料 | 第49-51页 |
| 1.1 病例选择 | 第49页 |
| 1.2 主要试剂 | 第49-50页 |
| 1.3 引物 | 第50页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第50页 |
| 1.5 主要试剂配制方法 | 第50-51页 |
| 2 研究方法 | 第51-55页 |
| 2.1 治疗方案 | 第51页 |
| 2.2 依据疗效分组 | 第51-52页 |
| 2.3 患者PBMCsJAK-STAT通路各分子的mRNA表达水平 | 第52-54页 |
| 2.4 患者PBMCs中JAK-STAT通路各分子蛋白表达水平 | 第54-55页 |
| 结果 | 第55-62页 |
| 1 临床治疗结果 | 第55-56页 |
| 1.1 患者特征 | 第55页 |
| 1.2 临床疗效 | 第55-56页 |
| 2 患者PBMCsJAK-STAT通路各分子的mRNA表达水平 | 第56-59页 |
| 3 患者PBMCsJAK-STAT通路各分子蛋白表达水平 | 第59-62页 |
| 讨论 | 第62-64页 |
| 结论与展望 | 第64-66页 |
| 1 结论 | 第64页 |
| 2 本研究的主要创新性 | 第64-65页 |
| 3 展望 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 攻读学位期间的研究成果及荣誉 | 第72-73页 |
| 综述 | 第73-81页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
