| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-20页 |
| 1.1 研究意义和目的 | 第9-10页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第10-17页 |
| 1.2.1 环境中PAHs和重金属污染 | 第10-11页 |
| 1.2.2 PAHs-重金属复合污染的微生物修复 | 第11-12页 |
| 1.2.3 PAHs-重金属复合污染物的代谢机制 | 第12-15页 |
| 1.2.4 环境污染生物修复的蛋白组学研究 | 第15-17页 |
| 1.3 研究内容 | 第17-18页 |
| 1.4 创新点 | 第18页 |
| 1.5 技术路线 | 第18-20页 |
| 第二章 S. maltophilia对BaP和Cu~(2+)的降解/吸附 | 第20-37页 |
| 2.1 材料与设备 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 培养基和培养条件 | 第21页 |
| 2.1.4 实验设备 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 菌悬液的制备 | 第22页 |
| 2.2.2 原生质体的制备 | 第22页 |
| 2.2.3 胞外聚合物的去除 | 第22-23页 |
| 2.2.4 细胞的化学修饰 | 第23页 |
| 2.2.5 BaP和Cu~(2+)的微生物降解/吸附 | 第23-24页 |
| 2.2.6 样品的分析检测 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-35页 |
| 2.3.1 S. maltophilia对BaP和Cu~(2+)的降解/吸附 | 第25-27页 |
| 2.3.2 细胞壁对S. maltophilia降解/吸附BaP和Cu~(2+)的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.3 P型- ATP酶抑制剂对S. maltophilia吸附Cu~(2+)的影响 | 第28-30页 |
| 2.3.4 解偶联剂对S. maltophilia吸附Cu~(2+)的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.5 去除EPS对S. maltophilia吸附Cu~(2+)的影响 | 第31-34页 |
| 2.3.6 化学修饰对不同体系中S. maltophilia吸附Cu~(2+)的影响 | 第34-35页 |
| 2.4 小结 | 第35-37页 |
| 第三章 BaP和Cu~(2+)复合污染物修复过程中S. maltophilia细胞的胁迫响应 | 第37-57页 |
| 3.1 材料与设备 | 第37-38页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第37页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.3 实验设备 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.2.1 流式细胞术分析 | 第38-39页 |
| 3.2.2 细胞破碎和ATP酶活性测定 | 第39页 |
| 3.2.3 细胞周期分析 | 第39页 |
| 3.2.4 细胞凋亡分析 | 第39页 |
| 3.2.5 细胞膜电位分析 | 第39-40页 |
| 3.2.6 透射电镜分析 | 第40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-55页 |
| 3.3.1 污染物BaP和Cu~(2+)对S. maltophilia细胞结构的影响 | 第40-42页 |
| 3.3.2 不同生长期中S. maltophilia细胞活性和完整性分析 | 第42-44页 |
| 3.3.3 污染物BaP和Cu~(2+)对S. maltophilia细胞膜的作用 | 第44-45页 |
| 3.3.4 污染物BaP和Cu~(2+)对S. maltophilia细胞ATP酶活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.5 S. maltophilia降解/吸附BaP和Cu~(2+)过程中细胞膜电位分析 | 第46-48页 |
| 3.3.6 不同污染修复体系中S. maltophilia细胞周期分析 | 第48-51页 |
| 3.3.7 不同修复体系中S. maltophilia细胞凋亡分析 | 第51-54页 |
| 3.3.8 S. maltophilia细胞的TEM观察 | 第54-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-57页 |
| 第四章 S. maltophilia降解/吸附BaP和Cu~(2+)的功能蛋白分析 | 第57-72页 |
| 4.1 材料与设备 | 第57-60页 |
| 4.1.1 实验菌株 | 第57页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第57-59页 |
| 4.1.3 实验设备 | 第59-60页 |
| 4.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 4.2.1 菌体总蛋白的提取和纯化 | 第60页 |
| 4.2.2 Bradford法测定蛋白质浓度 | 第60页 |
| 4.2.3 菌体蛋白的双向电泳 | 第60-61页 |
| 4.2.4 蛋白凝胶的染色 | 第61-62页 |
| 4.2.5 凝胶扫描和图像分析 | 第62页 |
| 4.2.6 蛋白凝胶酶解 | 第62页 |
| 4.2.7 差异蛋白的质谱鉴定 | 第62-63页 |
| 4.2.8 差异蛋白质的生物信息学分析 | 第63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-71页 |
| 4.3.1 S. maltophilia降解/吸附BaP和Cu~(2+)前后细胞全蛋白表达 | 第63-64页 |
| 4.3.2 BaP-Cu~(2+)复合和单一Cu~(2+)污染修复体系中菌体细胞蛋白表达差异分析 | 第64-65页 |
| 4.3.3 S. maltophilia降解/吸附BaP和Cu~(2+)主要差异蛋白的质谱鉴定 | 第65-68页 |
| 4.3.4 主要差异蛋白的相互作用网分析 | 第68-71页 |
| 4.4 小结 | 第71-72页 |
| 第五章 BaP和Cu~(2+)在S. maltophilia细胞界面的代谢和作用机制 | 第72-86页 |
| 5.1 材料与设备 | 第72-73页 |
| 5.1.1 实验菌株 | 第72页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第72-73页 |
| 5.1.3 实验设备 | 第73页 |
| 5.2 实验方法 | 第73-74页 |
| 5.2.1 菌体的化学修饰 | 第73页 |
| 5.2.2 细胞Zeta电位测定 | 第73页 |
| 5.2.3 细胞表面铜形态分析 | 第73-74页 |
| 5.2.4 细胞表面微观形貌分析 | 第74页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第74-85页 |
| 5.3.1 pH和离子强度对重金属Cu~(2+)吸附的影响 | 第74-75页 |
| 5.3.2 S. maltophilia吸附重金属Cu~(2+)过程中细胞表面Zeta电位的变化 | 第75-76页 |
| 5.3.3 S. maltophilia降解BaP和吸附Cu~(2+)的有效位点 | 第76-78页 |
| 5.3.4 S. maltophilia吸附Cu~(2+)后细胞表面铜化学形态分析 | 第78-81页 |
| 5.3.5 重金属铜与S. maltophilia细胞相互作用的显微观察 | 第81-85页 |
| 5.4 小结 | 第85-86页 |
| 第六章 结论 | 第86-89页 |
| 6.1 污染物BaP和Cu在菌体细胞界面的迁移/转化和去除机制 | 第86-87页 |
| 6.2 S. maltophilia细胞对BaP和Cu~(2+)复合污染物的胁迫响应 | 第87-88页 |
| 6.3 工作展望 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 在学期间发表论文清单 | 第99-100页 |
| 博士期间参与科研情况 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
