摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-29页 |
1.1 引言 | 第11页 |
1.2 硫醇(苯硫酚)和硒醇简明介绍 | 第11-13页 |
1.2.1 硫醇 | 第11-12页 |
1.2.2 硒醇 | 第12-13页 |
1.3 几类常见的近红外荧光探针 | 第13-17页 |
1.3.1 近红外探针概述 | 第13页 |
1.3.2 基于菁类染料的近红外探针 | 第13-15页 |
1.3.3 基于罗丹明类染料的近红外探针 | 第15页 |
1.3.4 基于氟硼二吡咯(BODIPY)类染料的近红外探针 | 第15-16页 |
1.3.5 基于噻嗪和噁嗪类染料的近红外探针 | 第16页 |
1.3.6 基于苯并吡喃腈(DCMB)染料的近红外探针 | 第16-17页 |
1.3.7 基于复合类染料的近红外探针 | 第17页 |
1.4 苯硫酚探针研究进展 | 第17-24页 |
1.4.1 开发苯硫酚探针的意义 | 第17-18页 |
1.4.2 基于磺酰胺键断裂的苯硫酚荧光探针 | 第18-21页 |
1.4.3 基于磺酰酯键断裂的苯硫酚荧光探针 | 第21-22页 |
1.4.4 基于二硝基苯基醚硫解的苯硫酚荧光探针 | 第22-24页 |
1.4.5 基于近红外染料的苯硫酚荧光探针 | 第24页 |
1.5 硒半胱氨酸探针研究进展 | 第24-27页 |
1.5.1 检测硒半胱氨酸的意义 | 第24-25页 |
1.5.2 硒半胱氨酸荧光探针的发展 | 第25-27页 |
1.6 本论文的研究目的与基本内容 | 第27-29页 |
第2章 近红外苯硫酚探针的合成、筛选及生物应用 | 第29-49页 |
2.1 引言 | 第29页 |
2.2 设计思路 | 第29-30页 |
2.3 实验部分 | 第30-37页 |
2.3.1 仪器与试剂 | 第30-31页 |
2.3.2 探针的合成与表征 | 第31-35页 |
2.3.3 光谱测试溶液的配制 | 第35-36页 |
2.3.4 探针检测下限计算 | 第36页 |
2.3.5 探针细胞毒性实验 | 第36页 |
2.3.6 探针细胞成像实验 | 第36页 |
2.3.7 动物活体成像实验 | 第36-37页 |
2.4 结果与讨论 | 第37-48页 |
2.4.1 探针的筛选 | 第37-41页 |
2.4.2 探针CCP-1的光谱性能研究 | 第41-44页 |
2.4.3 探针CCP-1与PhSH的响应机理研究 | 第44-45页 |
2.4.4 探针CCP-1的细胞成像应用 | 第45-47页 |
2.4.5 探针CCP-1的动物活体成像实验 | 第47-48页 |
2.5 本章小结 | 第48-49页 |
第3章 低背景荧光的硒醇荧光探针合成和光谱性能研究 | 第49-64页 |
3.1 引言 | 第49页 |
3.2 设计思路 | 第49-50页 |
3.3 实验部分 | 第50-54页 |
3.3.1 实验试剂 | 第50页 |
3.3.2 探针的合成与表征 | 第50-52页 |
3.3.3 光谱测试溶液的配制 | 第52-53页 |
3.3.4 荧光量子产率计算公式 | 第53页 |
3.3.5 探针Rhod-Sec的细胞毒性实验 | 第53页 |
3.3.6 细胞培养和细胞成像实验 | 第53页 |
3.3.7 由Na_2SeO_3和SeO_2产生的Sec成像实验 | 第53-54页 |
3.3.8 探针在HepG2细胞中的亚细胞定位 | 第54页 |
3.3.9 HepG2细胞的抗氧化能力测试 | 第54页 |
3.4 结果与讨论 | 第54-63页 |
3.4.1 探针背景荧光测试 | 第54-55页 |
3.4.2 化合物SNMR1、SNMR2和Rhod-Sec对Sec的响应灵敏度检测 | 第55页 |
3.4.3 探针Rhod-Sec对Sec的滴定实验 | 第55-57页 |
3.4.4 探针Rhod-Sec的选择性研究 | 第57-58页 |
3.4.5 探针Rhod-Sec对Sec响应的时间关系 | 第58页 |
3.4.6 pH对探针Rhod-Sec与Sec响应的影响 | 第58-59页 |
3.4.7 探针Rhod-Sec与Sec响应的机理研究 | 第59页 |
3.4.8 探针Rhod-Sec的细胞成像研究 | 第59-63页 |
3.5 本章小结 | 第63-64页 |
结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-75页 |
附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第75-76页 |
附录B 部分合成化合物一览图 | 第76-77页 |
附录C 部分化合物的谱图 | 第77-84页 |
致谢 | 第84页 |