| 摘要 | 第10-12页 |
| 英文摘要 | 第12-13页 |
| 1 引言 | 第14-25页 |
| 1.1 玉米秸秆资源概述 | 第14-16页 |
| 1.1.1 玉米秸秆产量 | 第14页 |
| 1.1.2 玉米秸秆营养价值 | 第14-15页 |
| 1.1.3 玉米秸秆应用现状 | 第15-16页 |
| 1.2 霉菌及霉菌毒素 | 第16-18页 |
| 1.2.1 霉菌及其毒素的种类和分布 | 第16页 |
| 1.2.2 霉菌毒素的危害 | 第16-17页 |
| 1.2.3 霉菌毒素的防控 | 第17-18页 |
| 1.3 饲料资源防霉研究概述 | 第18-19页 |
| 1.3.1 饲料资源受霉菌及其毒素污染现状 | 第18-19页 |
| 1.3.2 饲料防霉、脱毒添加剂 | 第19页 |
| 1.4 生物防治微生物研究概述 | 第19-21页 |
| 1.4.1 产几丁质酶菌的筛选与生物防治研究 | 第19-20页 |
| 1.4.2 乳酸菌生物防治研究 | 第20-21页 |
| 1.5 国内外研究进展 | 第21-23页 |
| 1.5.1 粗饲料霉菌污染问题 | 第21-22页 |
| 1.5.2 几丁质酶抑菌性研究 | 第22页 |
| 1.5.3 乳酸菌抑菌性研究 | 第22页 |
| 1.5.4 微生物法处理秸秆研究 | 第22-23页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第23页 |
| 1.7 本研究的主要内容 | 第23-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 玉米秸秆及菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 主要缓冲液及试剂配制 | 第25页 |
| 2.1.3 主要培养基 | 第25-26页 |
| 2.2 优势霉菌及拮抗菌株的分离、纯化 | 第26页 |
| 2.3 产几丁质酶菌株的筛选 | 第26页 |
| 2.4 优势霉菌的菌种鉴定 | 第26-27页 |
| 2.4.1 优势霉菌的形态学观察 | 第26-27页 |
| 2.4.2 优势霉菌的分子生物学鉴定 | 第27页 |
| 2.5 BS-1 菌株的菌种鉴定 | 第27页 |
| 2.6 BS-1 菌株产几丁质酶活性的测定 | 第27-28页 |
| 2.6.1 NAG标准曲线的建立 | 第27页 |
| 2.6.2 几丁质酶活性的测定 | 第27-28页 |
| 2.7 BS-1 菌株发酵液对霉菌抑制能力的测定 | 第28页 |
| 2.7.1 BS-1 菌株发酵上清液的制备 | 第28页 |
| 2.7.2 优势霉菌孢子悬液的制备 | 第28页 |
| 2.7.3 抑菌实验 | 第28页 |
| 2.8 三组微生物菌株对玉米秸秆的可利用情况分析 | 第28页 |
| 2.9 三组微生物菌株抑制玉米秸秆霉变试验设计及分组 | 第28-29页 |
| 2.10 各营养指标测定 | 第29页 |
| 2.11 有氧稳定性测定 | 第29-30页 |
| 2.11.1 有氧稳定性装置的制作 | 第29页 |
| 2.11.2 有氧稳定时间测定 | 第29-30页 |
| 2.11.3 霉菌总数的测定 | 第30页 |
| 2.12 数据处理及统计分析 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-49页 |
| 3.1 玉米秸秆中总霉菌的培养 | 第31页 |
| 3.2 玉米秸秆中优势霉菌的分离和菌种鉴定 | 第31-33页 |
| 3.2.1 优势霉菌的分离纯化及形态学观察 | 第31-33页 |
| 3.2.2 优势霉菌 18s r DNA序列测定 | 第33页 |
| 3.2.3 测序结果及同源性分析 | 第33页 |
| 3.3 BS-1 菌株的分离和菌种鉴定 | 第33-36页 |
| 3.3.1 产几丁质酶菌株的筛选 | 第33-34页 |
| 3.3.2 BS-1 菌株 16s rDNA序列测定 | 第34-35页 |
| 3.3.3 测序结果及同源性分析 | 第35-36页 |
| 3.4 BS-1 菌株产几丁质酶活性测定 | 第36-37页 |
| 3.4.1 NAG标准曲线的建立 | 第36-37页 |
| 3.4.2 不同培养时间产几丁质酶活力 | 第37页 |
| 3.5 BS-1 菌株发酵液对优势霉菌的抑制作用 | 第37-38页 |
| 3.6 三组菌株在不同培养基中生长曲线 | 第38-39页 |
| 3.7 玉米秸秆养分含量变化 | 第39-43页 |
| 3.7.1 15%水分条件下玉米秸秆各养分含量变化 | 第39页 |
| 3.7.2 20%水分条件下玉米秸秆各养分含量变化 | 第39-43页 |
| 3.7.3 25%水分条件下玉米秸秆各养分含量变化 | 第43页 |
| 3.8 有氧稳定性测定 | 第43-46页 |
| 3.8.1 有氧稳定时间测定 | 第43页 |
| 3.8.2 霉菌总数变化情况 | 第43-46页 |
| 3.9 不同水分条件下各处理抑制秸秆霉变效果的比较 | 第46-49页 |
| 3.9.1 玉米秸秆有氧存放 15d淀粉相对损失率 | 第46页 |
| 3.9.2 不同水分条件下各处理有氧稳定时间 | 第46-47页 |
| 3.9.3 不同水分条件下各处理最大霉菌数 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-54页 |
| 4.1 玉米秸秆中优势霉菌的分离、鉴定 | 第49页 |
| 4.2 产几丁质酶菌株BS-1 的筛选、鉴定 | 第49页 |
| 4.3 BS-1 产几丁质酶活性的测定 | 第49-50页 |
| 4.4 BS-1 发酵液对玉米秸秆中优势霉菌的抑制效果 | 第50页 |
| 4.5 三组菌株对玉米秸秆利用情况 | 第50-51页 |
| 4.6 不同水分条件下玉米秸秆有氧稳定性变化 | 第51-52页 |
| 4.6.1 有氧稳定性测定装置的制作 | 第51页 |
| 4.6.2 玉米秸秆开封后有氧稳定时间测定 | 第51页 |
| 4.6.3 玉米秸秆中霉菌总数测定 | 第51-52页 |
| 4.7 玉米秸秆常规养分含量变化 | 第52-53页 |
| 4.7.1 干物质含量变化 | 第52页 |
| 4.7.2 粗蛋白含量变化 | 第52页 |
| 4.7.3 中性洗涤纤维、酸性洗涤纤维含量变化 | 第52-53页 |
| 4.7.4 淀粉含量变化 | 第53页 |
| 4.8 不同水分情况下各处理抑制秸秆霉变的效果 | 第53-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第64页 |
