| 中文摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第13-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-22页 |
| 1 多发性骨髓瘤与缺氧 | 第16-17页 |
| 2 藤黄酸抗肿瘤的机制 | 第17-21页 |
| 3 本课题的研究任务 | 第21-22页 |
| 第二章 文献综述 缺氧与HIF-1 α的研究进展 | 第22-34页 |
| 1 缺氧与血管新生 | 第22页 |
| 2 HIF-1 α的激活及对下有基因的诱导 | 第22-25页 |
| 3 HIF-1 α在非肿瘤疾病中的作用 | 第25-28页 |
| 4 HIF-1 α与肿瘤 | 第28-31页 |
| 5 MM中缺氧与HIF-1 α作用 | 第31-34页 |
| 第三章 材料与方法 | 第34-48页 |
| 1 主要实验试剂 | 第34-35页 |
| 2 主要仪器耗材 | 第35-36页 |
| 3 实验室器械准备 | 第36页 |
| 4 试验方法 | 第36-48页 |
| 4.1 细胞系和培养条件 | 第36-37页 |
| 4.2 瑞氏染色 | 第37页 |
| 4.3 细胞增殖-毒性试验 | 第37-38页 |
| 4.4 酶联免疫吸附试验 | 第38-39页 |
| 4.5 逆转录PCR检测 | 第39-41页 |
| 4.6 实时荧光定量PCR检测 | 第41-43页 |
| 4.7 Western Blot方法检测细胞各蛋白表达水平 | 第43-45页 |
| 4.8 裸鼠皮下移植瘤模型的建立 | 第45页 |
| 4.9 肿瘤生长测量和抑制率 | 第45-46页 |
| 4.10 病理组织学检测 | 第46-47页 |
| 4.11 免疫荧光染色 | 第47页 |
| 4.12 统计学方法 | 第47-48页 |
| 第四章 实验结果 | 第48-63页 |
| 1 MM细胞株瑞氏染色形态观察 | 第48页 |
| 2 CCK-8法检测三种中药成分不同浓度时对MM细胞株影响 | 第48-50页 |
| 3 缺氧对MM细胞VEGF mRNA表达水平的影响 | 第50页 |
| 4 三种中药成分对MM细胞常氧和缺氧下VEGF mRNA影响 | 第50-52页 |
| 5 常氧与缺氧下藤黄酸对MM细胞VEGF分泌的影响 | 第52-53页 |
| 6 常氧与缺氧下藤黄酸对U266细胞VEGF蛋白表达的影响 | 第53-54页 |
| 7 常氧与缺氧下藤黄酸对U266细胞HIF-1 αmRNA表达的影响 | 第54页 |
| 8 常氧与缺氧下藤黄酸对U266细胞HIF-1 α蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
| 9 免疫荧光染色观察藤黄酸对U266细胞在缺氧下HIF-1 α的影响 | 第55-56页 |
| 10 PI3K/Akt/mTOR通路涉及缺氧下HIF-1 α/VEGF蛋白的合成 | 第56-57页 |
| 11 PI3K/Akt/mTOR通路抑制剂对HIF-1 α/VEGF表达的影响 | 第57-59页 |
| 12 PI3K/Akt/mTOR通路对HIF-1 α/VEGF mRNA影响 | 第59页 |
| 13 藤黄酸对U266细胞裸鼠体内成瘤的影响 | 第59-61页 |
| 14 CD31,VEGF和HIF-1 α在裸鼠移植瘤中的表达情况 | 第61-63页 |
| 第五章 讨论 | 第63-76页 |
| 1 多发性骨髓瘤与缺氧 | 第63-67页 |
| 2 藤黄酸对HIF-1 α/VEGF的抑制作用 | 第67-68页 |
| 3 藤黄酸下调HIF-1 α/VEGF的作用机制 | 第68-76页 |
| 第六章 总结与展望 | 第76-77页 |
| 1 总结 | 第76页 |
| 2 展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-88页 |
| 博士阶段发表文章 | 第88-89页 |
| 个人简介 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
