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与苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒39K相互作用的宿主细胞蛋白的筛查与鉴定

摘要第6-7页
Abstract第7-8页
文章中的缩略词第9-13页
1 引言部分第13-22页
    1.1 杆状病毒第13-16页
        1.1.1 杆状病毒的简介第13页
        1.1.2 杆状病毒的分类第13-14页
        1.1.3 杆状病毒的病毒粒子第14-15页
        1.1.4 杆状病毒的生活周期----以核型多角体病毒为例第15-16页
    1.2 杆状病毒基因表达的调控第16-17页
        1.2.1 杆状病毒基因表达的时序性第16页
        1.2.2 杆状病毒转录的调节第16-17页
        1.2.3 杆状病毒晚期表达因子第17页
    1.3 杆状病毒AcMNPV 39k的研究进展第17-18页
    1.4 蛋白质相互作用第18-21页
        1.4.1 酵母双杂交技术第19页
        1.4.2 双分子荧光互补技术第19-20页
        1.4.3 免疫共沉淀技术第20页
        1.4.4 荧光共振能量转移技术第20页
        1.4.5 蛋白质芯片技术第20-21页
    1.5 研究目的及意义第21-22页
2 实验材料和工具第22-32页
    2.1 实验材料第22-30页
        2.1.1 病毒及昆虫细胞系第22页
        2.1.2 大肠杆菌及酵母菌菌株第22页
        2.1.3 抗生素及培养基第22-25页
        2.1.4 常用酶及分子量Marker第25页
        2.1.5 试剂及试剂盒第25页
        2.1.6 常用溶液配方第25-27页
        2.1.7 载体和引物第27-29页
        2.1.8 实验中构建的重组质粒第29-30页
    2.2 主要仪器设备第30-32页
3 实验方法及步骤第32-47页
    3.1 重组载体构建第32-36页
        3.1.1 引物设计第32页
        3.1.2 PCR扩增目的片段第32-33页
        3.1.3 回收DNA凝胶片段第33页
        3.1.4 酶切PCR片段或质粒酶切鉴定第33页
        3.1.5 载体与目的片段的连接反应第33-34页
        3.1.6 Ca~(2+)化学转化感受态的制备第34页
        3.1.7 连接产物或质粒的转化第34-35页
        3.1.8 碱裂解法小量提取大肠杆菌质粒DNA第35页
        3.1.9 超纯质粒DNA的提取第35-36页
    3.2 酵母双杂交实验第36-41页
        3.2.1 LiAc法制备Y187和AH109酵母菌株感受态细胞及诱饵载体的转化第36-37页
        3.2.2 诱饵蛋白的自激活检测第37页
        3.2.3 诱饵蛋白的毒性检测第37页
        3.2.4 与Sf9 cDNA文库的融合杂交实验第37-39页
        3.2.5 划线筛选阳性克隆第39页
        3.2.6 酵母菌落PCR第39-40页
        3.2.7 X-Gal显色第40页
        3.2.8 酵母质粒的提取及PCR鉴定第40页
        3.2.9 将酵母质粒转化至大肠杆菌感受态细胞中第40页
        3.2.10 回交验证相互作用第40页
        3.2.11 测序及生物信息学分析第40-41页
    3.3 蛋白质原核表达与纯化第41-42页
        3.3.1 39K-His蛋白的原核表达第41页
        3.3.2 His标签融合蛋白的纯化第41-42页
    3.4 多克隆抗体的制备第42页
    3.5 非特异性抗体的中和第42-43页
    3.6 蛋白免疫印迹第43页
    3.7 重组Bacmid的构建第43-45页
        3.7.1 供体质粒的构建第43页
        3.7.2 重组Bacmid的获得第43-44页
        3.7.3 PCR验证重组Bacmid第44-45页
    3.8 细胞转染第45页
    3.9 细胞感染第45页
    3.10 双分子荧光共定位实验第45-46页
    3.11 双分子荧光互补实验第46页
    3.12 免疫共沉淀实验第46-47页
4 实验结果第47-63页
    4.1 与AcMNPV 39K相互作用的Sf9细胞蛋白基因的筛选第47-52页
        4.1.1 诱饵载体pGBKT7-39k的构建第47页
        4.1.2 GAL4 BD-39K融合蛋白的自激活和细胞毒性检测第47-48页
        4.1.3 与39K相互作用的Sf9细胞蛋白的cDNA克隆的筛选和鉴定第48-52页
    4.2 AcMNPV 39K与X在Sf9中的亚细胞共定位分析第52-55页
        4.2.1 共定位实验重组Bacmid的构建第52-54页
        4.2.2 AcMNPV 39K与X在Sf9中的亚细胞定位第54-55页
    4.3 AcMNPV 39K与X之间的双分子荧光互补分析第55-57页
        4.3.1 双分子荧光互补实验重组Bacmid的构建第55-56页
        4.3.2 双分子荧光互补分析结果第56-57页
    4.4 AcMPV 39K的原核表达和多克隆抗体制备第57-60页
        4.4.1 AcMNPV 39K的原核表达与纯化第57-59页
        4.4.2 AcMNPV 39K抗体的制备及非特异性His标签抗体的中和第59-60页
    4.5 AcMNPV 39K与X之间免疫共沉淀分析第60-63页
        4.5.1 免疫共沉淀实验重组Bacmid的构建第60-62页
        4.5.2 免疫共沉淀的分析结果第62-63页
5 讨论第63-65页
参考文献第65-71页
在校期间发表的论文第71-72页
致谢第72页

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