| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-12页 |
| ABSTRACT | 第12-17页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第18-23页 |
| 第一部分 建立缺血再灌注损伤的糖尿病小鼠心脏模型 | 第23-41页 |
| 1. 引言 | 第23-25页 |
| 2. 材料和方法 | 第25-30页 |
| 2.1 主要器材和试剂 | 第25-26页 |
| 2.2 实验液体的配制 | 第26页 |
| 2.3 建立糖尿病小鼠模型 | 第26-27页 |
| 2.4 测定小鼠感觉神经传导速度 | 第27-28页 |
| 2.5 建立离体心脏Langendorff缺血再灌注损伤模型 | 第28-29页 |
| 2.6 实验动物分组 | 第29页 |
| 2.7 统计学分析 | 第29-30页 |
| 3. 实验结果 | 第30-33页 |
| 3.1 2型糖尿病小鼠模型的建立 | 第30页 |
| 3.2 糖尿病小鼠感觉神经传导速度的改变 | 第30-31页 |
| 3.3 糖尿病小鼠心肌缺血再灌注损伤后的心功能 | 第31-33页 |
| 4. 讨论 | 第33-36页 |
| 5. 结论 | 第36-37页 |
| 本研究的创新之处 | 第36页 |
| 本研究的不足之处 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 第二部分 神经生长因子对糖尿病小鼠心肌缺血再灌注损伤的保护作用 | 第41-71页 |
| 1. 引言 | 第41-42页 |
| 2. 材料和方法 | 第42-59页 |
| 2.1 主要器材和试剂 | 第42-44页 |
| 2.2 实验液体的配制 | 第44-46页 |
| 2.3 构建携带小鼠NGF基因的腺病毒穿梭质粒 | 第46-50页 |
| 2.4 重组腺病毒的构建 | 第50-55页 |
| 2.5 重组腺病毒的心肌转染 | 第55-56页 |
| 2.6 心肌组织冰冻切片的制备 | 第56页 |
| 2.7 Western Blot检测心肌转染重组腺病毒后NGF的表达水平 | 第56-57页 |
| 2.8 离体心脏Langendorff灌流 | 第57-58页 |
| 2.9 统计学分析 | 第58-59页 |
| 3. 实验结果 | 第59-66页 |
| 3.1 表达小鼠神经生长因子的重组腺病毒的包装和鉴定 | 第59-62页 |
| 3.2 重组腺病毒心肌转染效果的鉴定 | 第62-63页 |
| 3.3 Ad-NGF改善糖尿病小鼠离体心脏缺血再灌注损伤后的心功能 | 第63-65页 |
| 3.4 灌流液中LDH含量的变化 | 第65-66页 |
| 4. 讨论 | 第66-68页 |
| 5. 结论 | 第68-69页 |
| 本研究的创新之处 | 第68页 |
| 本研究的不足之处 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-71页 |
| 第三部分 TRPV1途径在神经生长因子介导的糖尿病心肌缺血再灌注损伤的保护机制中的作用 | 第71-87页 |
| 1. 引言 | 第71-73页 |
| 2. 材料和方法 | 第73-76页 |
| 2.1 主要器材和试剂 | 第73页 |
| 2.2 实验液体的配制 | 第73-74页 |
| 2.3 实验动物的选择与分组 | 第74页 |
| 2.4 重组腺病毒的心肌转染 | 第74页 |
| 2.5 Western Blot检测心肌组织TRPV1表达水平 | 第74页 |
| 2.6 ELISA法测定心肌组织CGRP和SP的含量 | 第74-75页 |
| 2.7 建立离体心脏缺血再灌注损伤模型 | 第75页 |
| 2.8 统计学分析 | 第75-76页 |
| 3. 实验结果 | 第76-80页 |
| 3.1 TRPV1受体及下游神经递质CGRP、SP在糖尿病心肌的表达 | 第76-77页 |
| 3.2 I/R损伤后灌流液中CGRP和SP的变化 | 第77-78页 |
| 3.3 CGRP8-37抑制NGF对糖尿病心脏I/R损伤后的保护作用 | 第78-80页 |
| 4. 讨论 | 第80-83页 |
| 5. 结论 | 第83-84页 |
| 本研究的创新之处 | 第83页 |
| 本研究的不足之处 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-87页 |
| 综述 神经营养因子在心血管系统的研究进展 | 第87-109页 |
| 参考文献 | 第99-109页 |
| 作者简历及在读期间科研成果 | 第109-110页 |
