| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-30页 |
| 1.1 电化学生物传感器 | 第11-20页 |
| 1.1.1 电化学生物传感器概述 | 第11页 |
| 1.1.2 电化学生物传感器分类 | 第11-18页 |
| 1.1.3 电化学传感器中的信号产生机制 | 第18-20页 |
| 1.2 电化学生物传感器信号放大方法 | 第20-27页 |
| 1.2.1 酶催化放大技术 | 第20-21页 |
| 1.2.2 纳米材料放大技术 | 第21-23页 |
| 1.2.3 目标物循环放大技术 | 第23-25页 |
| 1.2.4 DNA扩增放大技术 | 第25-26页 |
| 1.2.5 DNA自组装放大技术 | 第26-27页 |
| 1.3 本文研究思路 | 第27-30页 |
| 第二章 基于目标物诱导链释放与纳米金信号放大策略检测腺苷的电化学适体传感器研究 | 第30-38页 |
| 2.1 前言 | 第30-31页 |
| 2.2 试验部分 | 第31-33页 |
| 2.2.1 材料和试剂 | 第31页 |
| 2.2.2 STV-MB/biotin-ABA/SH-SP生物耦合物的制备 | 第31-32页 |
| 2.2.3 SH-CP改良金电极的制备 | 第32页 |
| 2.2.4 放大的腺苷传感策略 | 第32页 |
| 2.2.5 电化学测量 | 第32-33页 |
| 2.3. 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 2.3.1 电化学适体传感器的设计原理 | 第33页 |
| 2.3.2 适体传感器构建过程的电化学表征 | 第33-34页 |
| 2.3.3 适体传感器的现象分析 | 第34-35页 |
| 2.3.4 硫堇浓度的优化 | 第35页 |
| 2.3.5 适体传感器分析性能研究 | 第35-36页 |
| 2.3.6 传感器的选择性研究 | 第36-37页 |
| 2.3.7 传感器对实际样品的检测 | 第37页 |
| 2.4 结论 | 第37-38页 |
| 第三章 DNA为模板原位合成的银纳米簇用以超灵敏且免标记的电化学MicroRNA检测 | 第38-49页 |
| 3.1 前言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-41页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.2 目标物辅助聚合剪切反应 (TAPNR) | 第40页 |
| 3.2.3 免标记、放大的电化学检测miRNA-199a | 第40-41页 |
| 3.2.4 电化学测量 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-48页 |
| 3.3.1 多重信号放大的电化学检测miRNA-199a的传感原理 | 第41-42页 |
| 3.3.2 传感器构建过程的表征 | 第42-43页 |
| 3.3.3 多重信号放大策略的可行性分析 | 第43页 |
| 3.3.4 传感器检测条件的优化 | 第43-44页 |
| 3.3.5 AgNCs的表征 | 第44-45页 |
| 3.3.6 电极表面DNA探针覆盖率研究 | 第45-46页 |
| 3.3.7 传感器对目标MiRNA-199a的定量检测 | 第46-47页 |
| 3.3.8 传感器的选择性分析 | 第47-48页 |
| 3.3.9 用于实际样品的检测 | 第48页 |
| 3.4 结论 | 第48-49页 |
| 第四章 基于癌细胞中多组分MicroRNA检测的电化学传感器的研究 | 第49-58页 |
| 4.1 前言 | 第49-50页 |
| 4.2．实验部分 | 第50-52页 |
| 4.2.1 试剂与材料 | 第50页 |
| 4.2.2 细胞培养以及全部RNA提取 | 第50-51页 |
| 4.2.3 传感器的构建 | 第51页 |
| 4.2.4 多组分测定miRNAs | 第51-52页 |
| 4.3．结果与讨论 | 第52-57页 |
| 4.3.1 生物传感器的设计原理 | 第52页 |
| 4.3.2 多组分检测的可行性研究 | 第52-53页 |
| 4.3.3 传感器构建的可行性分析 | 第53-54页 |
| 4.3.4 检测条件的优化 | 第54页 |
| 4.3.5 传感器对多组分目标miRNAs的定量分析 | 第54-56页 |
| 4.3.6 传感器的选择性测试 | 第56页 |
| 4.3.7 传感器对实际样品的检测 | 第56-57页 |
| 4.4 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-70页 |
| 在学期间所发表的论文 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
