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转录因子Nrf1α管控肝癌细胞恶性行为及其分子机制研究

中文摘要第3-5页
英文摘要第5-7页
缩略词表第12-14页
1 绪论第14-36页
    1.1 国内外研究现状及文献综述第15-31页
        1.1.1 Nrf1结构与功能第15-25页
        1.1.2 上皮间质细胞转化(EMT)第25-28页
        1.1.3 PI3K/AKT信号通路的调控第28-31页
    1.2 课题研究目的及研究内容第31-36页
        1.2.1 课题研究目的与意义第31-32页
        1.2.2 课题研究内容第32页
        1.2.3 课题创新之处第32-34页
        1.2.4 课题研究技术路线第34-36页
2 Nrf1α/TCF11在肝癌细胞中的差异表达第36-56页
    2.1 引言第36页
    2.2 实验材料、试剂与仪器第36-40页
        2.2.1 实验细胞株、质粒第36-37页
        2.2.2 仪器与设备第37页
        2.2.3 主要实验试剂第37-40页
    2.3 实验方法第40-50页
        2.3.1 实验用细胞的培养、接种、冻存及复苏第40-41页
        2.3.2 细胞总RNA提取及定量RT-PCR检测Nrf1 mRNA表达水平第41-43页
        2.3.3 细胞总RNA提取及TaqMan Assays分析Nrf1α/TCF11的差异表达第43-45页
        2.3.4 细胞总蛋白收集及Western blot检测Nrf1蛋白表达水平第45-47页
        2.3.5 Nrf1α/TCF11 CDS区域的克隆、质粒构建及测序鉴定第47-50页
        2.3.6 数据处理与统计学分析第50页
    2.4 结果分析第50-54页
        2.4.1 不同细胞Nrf1的差异表达第50-51页
        2.4.2 不同细胞Nrf1α/TCF11的差异表达第51-54页
    2.5 讨论第54-55页
    2.6 本章小结第55-56页
3 TALEN/慢病毒系统细胞平台的构建第56-84页
    3.1 引言第56-57页
    3.2 实验材料与试剂第57-58页
        3.2.1 细胞与试剂第57页
        3.2.2 仪器设备第57-58页
    3.3 实验方法第58-69页
        3.3.1 TALEN技术第58-59页
        3.3.2 靶向Nrf1α 的TALEN质粒构建及鉴定第59-61页
        3.3.3 靶向Nrf1α 的TALEN质粒活性检测第61-64页
        3.3.4 TALEN介导Nrf1α 同源双敲除细胞(HepG2)的建立第64-65页
        3.3.5 慢病毒技术第65-66页
        3.3.6 Nrf1慢病毒RNA干扰与Nrf1α 超表达质粒的构建及鉴定第66-67页
        3.3.7 慢病毒的包装、浓缩和滴度测定第67-68页
        3.3.8 慢病毒转染HepG2细胞与TALEN细胞第68页
        3.3.9 TALEN细胞和慢病毒转染细胞Nrf1差异表达检测第68-69页
        3.3.10 免疫荧光染色第69页
        3.3.11 数据处理与统计学分析第69页
    3.4 实验结果第69-81页
        3.4.1 靶向Nrf1α 的TALEN质粒构建及鉴定第69-72页
        3.4.2 靶向Nrf1α 的TALEN质粒活性检测第72-73页
        3.4.3 TALEN介导Nrf1α 同源双敲除细胞(HepG2)的建立第73-76页
        3.4.4 Nrf1慢病毒RNA干扰与Nrf1α 超表达质粒的构建及鉴定第76-77页
        3.4.5 重组慢病毒滴度的确定第77-78页
        3.4.6 重组慢病毒转染HepG2细胞与TALEN细胞第78-79页
        3.4.7 Nrf1蛋白免疫荧光染色第79-81页
    3.5 讨论第81-82页
    3.6 本章小结第82-84页
4 调控Nrf1α 表达对肝癌细胞生物学行为的影响第84-96页
    4.1 引言第84页
    4.2 实验材料与仪器第84页
    4.3 实验方法第84-86页
        4.3.1 SEM观察细胞形态第84页
        4.3.2 MTS法检测细胞增殖能力第84-85页
        4.3.3 软琼脂平板克隆形成实验第85页
        4.3.4 细胞划痕法检验细胞迁移能力第85-86页
        4.3.5 Transwell检测细胞跨膜迁移能力第86页
        4.3.6 流式细胞术检测细胞凋亡能力第86页
        4.3.7 数据处理与统计学分析第86页
    4.4 实验结果第86-93页
        4.4.1 Nrf1α 缺失改变肝癌细胞形态第86-88页
        4.4.2 Nrf1α 缺失影响肝癌细胞增殖能力第88-89页
        4.4.3 Nrf1α 缺失调控肝癌细胞迁移能力第89-92页
        4.4.4 Nrf1α 缺失改变细胞凋亡能力第92-93页
    4.5 讨论第93-94页
    4.6 本章小结第94-96页
5 调控Nrf1α 表达对肝癌细胞转移机制的研究第96-116页
    5.1 引言第96页
    5.2 实验材料试剂第96-97页
        5.2.1 细胞与动物第96页
        5.2.2 试剂与材料第96-97页
    5.3 实验方法第97-100页
        5.3.1 细胞大规模培养及接种第97页
        5.3.2 动物饲养及实验分组第97-98页
        5.3.3 移植瘤体积监测第98页
        5.3.4 收集标本与预处理第98页
        5.3.5 临床HCC病例收集与处理第98页
        5.3.6 SABC法免疫组织化学第98-99页
        5.3.7 细胞组织总RNA提取及定量RT-PCR实验第99页
        5.3.8 细胞组织总蛋白收集及western实验第99页
        5.3.9 数据处理与统计学分析第99-100页
    5.4 结果分析第100-112页
        5.4.1 Nrf1α 缺失促进裸鼠皮下移植瘤恶性增殖并发肝脏转移第100-102页
        5.4.2 Nrf1α缺失7T导致细胞周期与凋亡相关基因异常表达7T第102-105页
        5.4.3 Nrf1α缺失7T导致细胞行为相关基因异常表达7T第105-108页
        5.4.4 人源肝癌细胞系和肝癌组织Nrf17T的异常7T表达第108-112页
    5.5 讨论第112-115页
    5.6 本章小结第115-116页
6 初探Nrf1α 调控肝癌细胞恶性转化的分子网络第116-134页
    6.1 引言第116页
    6.2 实验材料第116-117页
    6.3 实验方法第117-120页
        6.3.1 RNA-Sequencing样品准备第117页
        6.3.2 RNA-Sequencing数据采集与分析第117-118页
        6.3.3 基因启动子区域分析及ARE位点质粒构建第118-119页
        6.3.4 双荧光素酶活性分析第119-120页
        6.3.5 总RNA提取及定量RT-PCR分析第120页
        6.3.6 总蛋白收集及western分析第120页
        6.3.7 Nrf1调控肝癌细胞恶性转化分子网络的构建第120页
        6.3.8 数据处理与统计学分析第120页
    6.4 实验结果第120-130页
        6.4.1 RNA-Sequencing数据采集分析第120-125页
        6.4.2 启动子双荧光素酶活性检测第125-127页
        6.4.3 Nrf1α 参与调控PTEN/PI3K/AKT介导的分子网络第127-129页
        6.4.4 Nrf1调控肝癌细胞恶性转化分子网络的构建第129-130页
    6.5 讨论第130-132页
    6.6 本章小结第132-134页
7 全文总结第134-138页
    7.1 全文讨论第134-136页
    7.2 全文结论第136-137页
    7.3 后续研究工作与展望第137-138页
致谢第138-140页
参考文献第140-152页
附录第152-160页
    A. 作者在攻读学位期间发表的论文目录第152页
    B. 作者在攻读学位期间参加科研项目情况第152-153页
    C. TALEN识别模块标准序列第153-154页
    D. 实时定量PCR引物序列表第154-156页
    E. 启动子ARE位点引物序列表第156-160页
    F. 启动子ARE位点突变引物序列表第160页

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